|
Элементы местной
реакции через: |
Оценка
реакции |
|
|
24 ч |
48 ч |
|
|
Инфильтрат
отсутствует, |
Реакции нет |
Отрицательная
(-) |
|
Гиперемия до 8 мм
в |
Гиперемия
менее |
Сомнительная
(+/-) |
|
Гиперемия 8-15 мм
в |
Гиперемия 8 мм
в |
Слабоположительная
(+) |
|
Гиперемия 16-25
мм в |
Гиперемия 8 мм
в |
Положительная
(++) |
|
Гиперемия 26-40
мм в |
Гиперемия 8 мм
в |
Резкоположительная |
|
Гиперемия более
40 мм в |
Гиперемия 8 мм
в |
Очень
резкоположитель- |
Диагноз сибирской язвы подтверждается при наличии положительной
+ +
антраксиновой пробы с оценкой от 2 до 4 . При наличии сомнительной (+/-)
или слабоположительной (+) пробу повторяют через 5-7 дней. Отрицательная
реакция на антраксин не исключает диагноза сибирской язвы.
Для диагностики сибирской язвы у свиней
применяют сибиреязвенный аллерген диагностический. Аллерген вводят с
соблюдением всех правил асептики строго внутрикожно в объеме 0,2 мл в среднюю
часть наружной поверхности уха. На месте инъекции должен образовываться плотный
инфильтрат размером с горошину, который исчезает через 15-20 мин.
Кожно-аллергическую реакцию учитывают через 6 или 24 ч, измеряя кутиметром зону
инфильтрата и увеличение толщины кожной складки в месте введения аллергена по
сравнению с нормой. Оценку реакции проводят по трехбалльной шкале:
- (-) реакция отрицательная - отсутствие
инфильтрата и гиперемии в месте введения препарата, утолщение кожной складки не
более чем на 2 мм по сравнению с исходной;
- (+/-) реакция сомнительная - наличие
инфильтрата до 10 мм в диаметре, гиперемия слабая или может отсутствовать,
утолщение кожной складки до 3 мм;
- (+) реакция положительная - наличие
инфильтрата и гиперемии диаметром свыше 10 мм, утолщение кожной складки на 3 мм
и более.
При наличии положительной (+) реакции
через 6 или 24 ч после инъекции животное признают больным и изолируют. Если
через 6 или 24 ч после инъекции аллергена у животного регистрируют
отрицательную реакцию, то его признают здоровым. При регистрации сомнительной
(+/-) реакции через 24 ч аллерген вводят повторно в кожу другого уха. Если
после повторного введения аллергена через 6 или 24 ч у животного регистрируют
положительную или сомнительную реакцию, то его признают больным и изолируют.
5.4.5. ИФА для выявления специфических
антител в сыворотке крови
Этот метод используется за рубежом в
качестве альтернативы пробы с антраксином у человека. В настоящее время
диагностический набор для выявления специфических иммуноглобулинов классов M и
G в сыворотке людей, позволяющий дифференцировать заболевание и ответ на
вакцинацию, разработан у нас в стране. Он прошел комиссионные испытания, но
пока не выпускается.
5.5.
Молекулярно-генетические методы исследования
Работу выполняют в соответствии с
методическими указаниями МУ 1.3.1794-03 "Организация работы при
исследованиях методом ПЦР материала, инфицированного микроорганизмами I-II
групп патогенности".
5.5.1. Обеззараживание проб для
исследования методом ПЦР
Обеззараживание материала проводят
согласно методическим указаниям МУ 3.5.5.1034-01 "Обеззараживание
исследуемого материала, инфицированного бактериями I-IV групп патогенности, при
работе методом ПЦР". Обработка включает два этапа: перевод спор в
вегетативную форму и обработка лизирующим буфером, содержащим
гуанидинтиоцианат.
А) Герминация спор и обработка
вегетативных форм B. anthracis пенициллином. Предварительно подготовленный
нативный материал в количестве 0,1 мл или одну бактериологическую петлю
18-часовой агаровой культуры подозрительных колоний засевают в стеклянные
пробирки с 0,9 мл бульона Хоттингера pH 7,4 и инкубируют с аэрацией при (36 +/-
1) град. С в течение 2,5 ч. После этого в пробирки добавляют пенициллин (до
конечной концентрации 1000 ЕД/мл) и инкубируют с аэрацией 15 мин. при (36 +/-
1) град. С. Затем прогревают при 100 град. С в течение 10 мин. на водяной бане.
Допускается прогревание проб, обработанных пенициллином, в твердотельном
термостате при 100 град. С, для чего содержимое стеклянной пробирки переносят в
микроцентрифужную пробирку объемом 1,5-1,7 мл с завинчивающейся или
защелкивающейся крышкой. При необходимости перед прогреванием пробы могут быть
сконцентрированы путем центрифугирования при 12000 об./мин. в течение 15 мин. с
последующим ресуспендированием осадка в 100 мкл 0,9%-ного раствора хлорида
натрия.
Б) Обработка лизирующим буфером с
гуанидинтиоцианатом. После прогревания при 100 град. С в течение 10 мин. из
пробирок отбирают по 0,1 мл материала и переносят в отдельные микроцентрифужные
пробирки объемом 1,5 мл с 300 мкл лизирующего раствора, содержащего 6 М
гуанидинтиоцианата (Прилож., 2.5). Затем инкубируют при 65 град. С в течение 15
мин.
Обработанные таким образом пробы
считаются обеззараженными, и всю последующую работу проводят как с незаразным
материалом.
Для проведения этого этапа и дальнейшего
выделения ДНК используют коммерческие наборы, содержащие 6 М гуанидинтиоцианата
(Прилож. 5), или готовят необходимые реактивы самостоятельно (Прилож. 2).
5.5.2. Выделение ДНК
Для выделения ДНК используют метод
нуклеосорбции. Если применяются коммерческие наборы для выделения, то работу
проводят в соответствии с инструкцией по применению препаратов. При
использовании самостоятельно подготовленных реагентов работу осуществляют
следующим образом. В пробирки после прогревания с лизирующим буфером при 65
град. С в течение 15 мин. добавляют 25-30 мкл сорбента, который предварительно
тщательно перемешивают на микроцентрифуге/встряхивателе. Пробирки инкубируют
при комнатной температуре в течение 10 мин., перемешивая их на
микроцентрифуге/встряхивателе каждые 2 мин., после чего центрифугируют при
8000-12000 об./мин. в течение 30 с. Надосадочную жидкость удаляют, используя
наконечник с аэрозольным барьером.
К осадку добавляют 300 мкл раствора для
первой отмывки ОР-1, перемешивают содержимое пробирки до гомогенного состояния
и центрифугируют при 8000-12000 об./мин. в течение 30 с. Супернатант удаляют, а
к осадку добавляют 500 мкл раствора для второй отмывки ОР-2, перемешивают в
течение 30 с и центрифугируют при аналогичных условиях. Отмывку ОР-2 повторяют
еще раз. После удаления надосадочной жидкости добавляют 400 мкл ацетона,
тщательно перемешивают и центрифугируют при 8000-12000 об./мин. в течение 30 с.
Супернатант тщательно удаляют, а осадок высушивают при 65 град. С в течение 10
мин. После этого добавляют 30-50 мкл ТЕ-буфера и инкубируют при 65 град. С в
течение 10 мин., перемешивая на микроцентрифуге/встряхивателе каждые 2 мин.
Затем пробирки центрифугируют при 8000-12000 об./мин. в течение 1 мин.,
супернатант используют для постановки ПЦР.
5.5.3. Проведение ПЦР для специфической
индикации и идентификации B. anthracis
Для проведения реакции используют
тест-системы для выявления ДНК B. anthracis, разрешенные к применению в
установленном порядке, позволяющие проводить учет результатов методами
электрофореза в агарозном геле или методом ПЦР в режиме реального времени, либо
с флуоресцентной детекцией по "конечной точке". Работу проводят в
соответствии с инструкциями к диагностическим тест-системам.
5.6. Идентификация
культур
Все выделенные культуры, подозрительные
на принадлежность к B. anthracis, обязательно подвергают дальнейшему изучению
биологических свойств, служащих критерием видовой идентификации, а при
необходимости и целого ряда дополнительных свойств, являющихся основой для
внутривидового типирования.
В предлагаемой схеме (Прилож. 7, рис. 10)
представлены тесты идентификации и внутривидовой дифференциации сибиреязвенного
микроба.
Тесты разделены на три группы. Тест
группы I является ускоренным идентификационным и одновременно позволяющим
дифференцировать штаммы по плазмидному составу. Метод ускоренной идентификации
заключается в использовании ПЦР в мультиплексном варианте. Для этого может быть
использована тест-система "АмплиСенс Bacillus anthracis - FRT" или
другие разрешенные к применению в установленном порядке тест-системы с
праймерами к плазмидным генам капсуло- и токсинообразования и специфическим
хромосомным локусам сибиреязвенного микроба.
Тесты группы II являются основными, из
них тесты 1-6 служат опорными.
Тесты группы III являются дополнительными
методами изучения выделенных сибиреязвенных культур.
5.6.1. Основные идентификационные тесты
(тесты группы II)
5.6.1.1. Морфология B. anthracis
В мазках из 18-24-часовых бульонных и
агаровых культур вегетативные клетки имеют форму палочек, расположенных
длинными цепочками. Концы бацилл в окрашенных препаратах обрублены и вогнуты,
отчего цепочка напоминает бамбуковую трость с коленчатыми сочленениями. По
Граму бациллы сибирской язвы окрашиваются положительно. Споры имеют овальную
форму, внутри бактериальной клетки образуется одна спора, располагающаяся
центрально, не превышая диаметра тела микробной клетки. Размеры вегетативных
клеток сибиреязвенного микроба 1-1,5х6-10 мкм, спор - 0,8-1х1,5 мкм.
Морфологию спор определяют в культуре,
полученной на плотной питательной среде при культивировании в течение 3-7
суток. Существует несколько способов окраски спор, основанных на том, чтобы
сделать проницаемой для краски их плотную оболочку (Ауэски, Пешкова,
Циля-Нильсена). Для дифференциации от других грамположительных бацилл мазки
окрашивают сибиреязвенными люминесцирующими сыворотками, ориентируясь при
микроскопии на морфологию клеток и специфическое свечение (ярко-зеленая
периферия и более темная сома клеток).
Приготовленные мазки фиксируют в
фиксирующей жидкости, содержащей перекись водорода (Прилож., 2.1).
5.6.1.2. Характер роста на плотных и в
жидких питательных средах
Характер роста на агаровых средах
определяют визуально невооруженным глазом или через лупу, а также под
микроскопом, для чего чашку помещают на столик микроскопа вверх дном и
просматривают колонии в проходящем свете при малом увеличении и с суженной
диафрагмой. Оценивают колонии по их морфологии: величине, форме, виду, цвету,
характеру поверхности и края, прозрачности, структуре, консистенции, а также по
специфическому запаху. На МПА и агаре Хоттингера возбудитель сибирской язвы
формирует крупные шероховатые матовые серые сухие колонии в R-форме с
"шагреневой" поверхностью, неровными краями и отходящими от них
волнистыми отростками, напоминающими при просмотре в микроскопе (малое
увеличение) локоны волос или львиную гриву. Колонии сибиреязвенного микроба на
плотных питательных средах отличаются от колоний спорообразующих сапрофитов
меньшими размерами, большей шероховатостью и более выраженными
"локонами" по периферии. Колония сибиреязвенного микроба с трудом берется
бактериологической петлей, при этом за петлей поднимается тяж бактериальной
массы. Агаровая культура сибиреязвенного микроба имеет специфический слегка
ароматический запах.
При использовании
дифференциально-диагностической среды с натрия фенолфталеинфосфатом учитывают
одновременно два важных диагностических признака - характер выросших колоний и
тест на щелочную фосфатазу (п. 5.2.4).
В МПБ сибиреязвенный микроб растет в виде
придонного "комочка ваты", бульон над которым остается прозрачным.
"Комочек ваты" бульонной культуры B. anthracis с трудом разбивается
при встряхивании, в отличие от подобного придонного роста некоторых
представителей спорообразующих сапрофитов, легко разбивающегося и вызывающего
помутнение среды.
5.6.1.3. Тест на подвижность
Одним из наиболее постоянных для
сибиреязвенного микроба признаков является отсутствие подвижности, в отличие от
большинства спорообразующих сапрофитов. Можно определить подвижность путем
высева культуры уколом в столбик полужидкого (0,2-0,3%) агара. Посевы выдерживают
в термостате при температуре (36 +/- 1) град. С в течение 18-20 ч. В полужидком
агаре рост сибиреязвенного микроба наблюдается только по следу укола, а
окружающая среда остается прозрачной. Подвижные микробы дают диффузный рост.
Простым методом определения подвижности является микроскопическое исследование
в "висячей" или раздавленной капле, а также в камере Горяева
18-20-часовой бульонной культуры. Однако описаны и неподвижные варианты B.
cereus и других сапрофитов.
5.6.1.4. Обнаружение капсулы in vitro
Обнаружение капсулы in vitro проводят
посевом культур на 1%-ный бикарбонатно-сывороточный агар или среду ГКИ
(Прилож., 1.2 и 1.3). Инкубацию на 1%-ном бикарбонатном агаре проводят при (36
+/- 1) град. С в анаэростатах при содержании 5-50% CO2 или в эксикаторе с
притертой крышкой. На дно эксикатора (на каждый литр объема) насыпают 0,4 г
пищевой соды и наливают 0,35 мл концентрированной соляной кислоты или 2 г
NaHCO3 + 10 мл 20% H2SO4. После внесения чашек Петри с посевами эксикатор
закрывают крышкой и слегка наклоняют, соединяя соду с кислотой. Просматривают
посевы через 18-24 ч. Капсулообразующие культуры вырастают в виде крупных
гладких блестящих слизистых колоний. В мазках, окрашенных после их фиксации
одним из методов (по Ребигеру, капсульно-соматической сибиреязвенной
люминесцирующей сывороткой), видны цепочки палочек, окруженные хорошо
выраженной капсулой.
Пробирки со средой ГКИ с посевами
закрывают стерильными резиновыми пробками и помещают в термостат при (36 +/- 1)
град. С. Через 30-120 мин. инкубирования у отдельных сибиреязвенных клеток
начинается капсулообразование, а спустя 16-18 ч все или большинство
сибиреязвенных клеток образуют капсулу. В мазках из посевов, окрашенных одним
из описанных методов, видны длинные цепочки палочек, окруженных капсулой.
5.6.1.5. Обнаружение капсулы in vivo
При вскрытии биопробных животных, которым
введена исследуемая культура, делают мазки из перитонеального экссудата и крови
сердца и мазки-отпечатки из органов. Мазки фиксируют и окрашивают по Ребигеру
или метиленовой синькой. В мазках от животных микробы расположены короткими
цепочками, попарно или поодиночке, окружены розовой капсулой. Способность к
капсулообразованию in vivo из всех представителей рода Bacillus присуща только
возбудителю сибирской язвы. Встречающиеся в природе атипичные штаммы, не образующие
капсулу, но по другим тестам соответствующие сибиреязвенному микробу, требуют
дополнительных исследований.
5.6.1.6. Чувствительность к
сибиреязвенным бактериофагам
Сибиреязвенный микроб лизируется
сибиреязвенными фагами ("Гамма", "К", Fah-ВНИИВВиМ и др.).
Пробу с фагом ставят следующим образом. Свежеприготовленные чашки с агаром
Хоттингера или МПА перед постановкой пробы подсушивают в термостате.
Расчерчивают дно чашки снаружи на квадраты со стороной 2 см. Бактериологической
петлей или пипеткой на каждый квадрат наносят каплю 5-6-часовой бульонной
культуры сибиреязвенного микроба. Чашку с приоткрытой крышкой подсушивают 30
мин. в термостате, а затем в центр подсохшей капли наносят петлей каплю
цельного сибиреязвенного бактериофага. Результаты учитывают через 5-6 ч
инкубации чашек при (36 +/- 1) град. С, просматривая их под малым увеличением
микроскопа. В более поздние сроки через 12-24 ч просматривают чашки
невооруженным глазом. В случае положительного результата на месте нанесения
капли бактериофага наблюдается полное или частичное отсутствие роста в виде
округлого просветления. Допускается постановка пробы с фагом методом стекающей
капли в пробирках или чашках с агаром Хоттингера или МПА.
5.6.1.7. Тест на гемолиз
Для проведения этого теста готовят МПА
или агар Хоттингера (pH 7,2) с 3-5% дефибринированной крови барана (Прилож.,
1.4). Посев испытуемых культур производят бактериологической петлей секторами и
инкубируют в термостате при (36 +/- 1) град. С в течение 18-20 ч, после чего
учитывают результат. В эти сроки сибиреязвенный микроб не лизирует эритроциты
барана, в отличие от большинства родственных спорообразующих сапрофитов,
образующих широкую зону гемолиза вокруг выросших колоний.
5.6.1.8. Тесты на чувствительность к
пенициллину
5.6.1.8.1. Тест "жемчужного
ожерелья". Перед постановкой пробы остуженный до 45 град. С 2%-ный
питательный агар разливают по 10 мл в 3 пробирки. В первую добавляют пенициллин
из расчета 0,5 ЕД/мл, во вторую - 0,05 ЕД/мл, третья - без антибиотика -
остается контрольной. Содержимое каждой пробирки выливают в чашку Петри. После
застывания среды дно чашек снаружи размечают на квадраты или кружки, на которых
пишут номера анализа. На обозначенные участки наносят по одной капле изучаемых
3-6-часовых бульонных культур. На одной чашке может быть поставлено до 10 проб.
Посевы инкубируют при (36 +/- 1) град. С. Не позже 3 ч просматривают рост под
микроскопом с иммерсионным объективом, предварительно накрыв каждый отмеченный
участок покровным стеклом. На среде, содержащей пенициллин, видны шарообразной
формы бактериальные клетки сибиреязвенного микроба, расположенные в виде
цепочек, напоминающих ожерелье из жемчуга. Спорообразующие сапрофиты, как
правило, устойчивые к пенициллину, имеют обычную бациллярную форму. В
контрольной среде без пенициллина сибиреязвенный микроб формирует длинные цепи
палочек.
5.6.1.8.2. Модификация теста
"жемчужного ожерелья". К бульону Хоттингера (pH 7,2) добавляют
стерильно 20% инактивированной лошадиной сыворотки, 0,05 и 0,5 ЕД/мл
пенициллина. Среды разливают с соблюдением стерильности в пробирки по 2-3 мл и
засевают по 2 капли бульонной или петлю агаровой культуры, взятой для
исследования. Пробирки с посевами инкубируют не более 3 ч при (36 +/- 1) град.
С. Затем делают мазки, фиксируют их, и окрашивают по Ребигеру или метиленовой
синькой.
5.6.1.8.3. Определение чувствительности к
пенициллину диско-диффузионным методом. Из колоний суточных агаровых культур
готовят взвесь микробов на 0,9%-ном растворе натрия хлорида, доводя плотность
инокулюма до ОСО мутности 10 ед. ГИСК им. Л.А.Тарасевича. Эту взвесь в объеме
0,3 мл наносят на поверхность питательной среды Мюллера-Хинтона или агара
Гивенталя-Ведьминой (АГВ) и равномерно распределяют шпателем. Чашки выдерживают
15 мин. при комнатной температуре для впитывания жидкости. Затем на поверхность
засеянной питательной среды пинцетом накладывают коммерческий диск с 10 мкг
пенициллина. Посевы выдерживают 15 мин. при комнатной температуре, а затем,
перевернув чашки вверх дном, инкубируют при (36 +/- 1) град. С в течение 18-20
ч (не более). Измеряют диаметр зон задержки роста вокруг дисков, включая
диаметр самого диска, с точностью до 1 мм. Мелкие колонии в пределах зоны
задержки роста не учитывают. При расплывчатых краях зоны или при зонах с
двойными контурами измеряют диаметр зоны по наиболее четкой границе. Типичные
штаммы сибиреязвенного микроба, чувствительные к пенициллину, характеризуются
зоной задержки роста 26 мм и больше, близкородственные сапрофиты - 16 мм и
меньше.
5.6.2. Дополнительные методы изучения
выделенных культур B. anthracis (тесты группы III)
5.6.2.1. Определение чувствительности
сибиреязвенного микроба к антибиотикам
Большинство природных штаммов B.
anthracis чувствительно ко многим используемым в практике антибиотикам. Однако
встречаются и природные изоляты, которые в той или иной степени устойчивы к
различным антибиотикам, что затрудняет проведение лечебных мероприятий в случае
заражения таким штаммом. Определение чувствительности штаммов сибиреязвенного
микроба, выделенных от больных, является необходимой мерой для выбора наиболее
эффективного препарата для лечения тяжелых форм сибирской язвы.
Для определения чувствительности B.
anthracis к антибактериальным препаратам можно использовать метод серийных
разведений антибиотиков или диско-диффузионный метод.
При определении чувствительности
сибиреязвенного микроба с помощью ДДМ используют типичные колонии из
16-18-часовых агаровых культур. Из выросших колоний готовят взвесь микробов в
0,9%-ном растворе натрия хлорида, доводя плотность инокулюма до ОСО мутности 10
ед. ГИСК им. Л.А.Тарасевича. Эту взвесь в объеме 0,3 мл наносят на поверхность
питательной среды Мюллера-Хинтона или АГВ и равномерно распределяют шпателем.
Чашки выдерживают 15 мин. при комнатной температуре для впитывания жидкости.
Диски накладывают пинцетом на поверхность засеянной питательной среды на
одинаковом расстоянии один от другого, отступив около 2 см от стенки чашки (не
более 4 дисков), выдерживают 15 мин. при комнатной температуре, а затем,
перевернув их вверх дном, инкубируют при (36 +/- 1) град. С в течение 18-20 ч
(не более). Измеряют диаметр зон задержки роста вокруг дисков, включая диаметр
самого диска, с точностью до 1 мм. Мелкие колонии в пределах зоны задержки
роста не учитывают. При расплывчатых краях зоны или при зонах с двойными контурами
измеряют диаметр зоны по наиболее четкой границе.
Для метода серийных разведений используют
суспензию той же концентрации микробных клеток, нанося ее небольшими каплями с
помощью штампа-репликатора или касанием пипетки с тонким концом на агаровые
пластинки среды Мюллера-Хинтона или АГВ с разными концентрациями
антибактериальных препаратов, начиная с чашек с минимальным содержанием
антибиотиков. Посевы инкубируют 18-24 ч при температуре (36 +/- 1) град. С. С
помощью штампа-репликатора можно одновременно изучить антибиотикограммы 50
культур, что значительно экономит средства и время.
Чувствительность/устойчивость культур определяют по минимальной подавляющей
концентрации (МПК, мг/л или мкг/мл) препарата, угнетающей рост возбудителя на
среде культивирования.
Интерпретация результатов
Интерпретацию результатов проводят путем
их сопоставления с пограничными значениями МПК и диаметров зон подавления роста
возбудителя (табл. Прилож. 3). В таблице даны пограничные значения МПК и зон
подавления роста для чувствительных и устойчивых культур. Между этими
показателями находятся значения для культур с промежуточной устойчивостью.
Необходимо учитывать результаты определения МПК и зон подавления роста для
контрольных штаммов B. anthracis СТИ и Staphylococcus aureus АТСС 25923 на
данной серии питательной среды. Изменения МПК и диаметров зон подавления роста
для контрольных штаммов, выходящие за пределы допустимых значений, могут
свидетельствовать о несоответствии качества сред или дисков с
антибактериальными препаратами и потребовать их замены. Увеличение МПК для
исследуемых штаммов, по сравнению с контрольным штаммом B. anthracis СТИ, может
свидетельствовать о тенденции к нарастанию устойчивости культур, что требует
изменения схемы терапии данным антибиотиком или использования для лечения и
профилактики другого более эффективного антибактериального препарата.
В паспорте штамма должны быть указаны
значения МПК и диаметры зон подавления роста для всех исследованных препаратов
с интерпретацией результатов исследования: культура чувствительна, устойчива
или имеет промежуточную устойчивость.
5.6.2.2. Метод определения гемолитической
и протеолитической активности
Определение проводят в соответствии с
методическими рекомендациями "Определение гемолитической активности у
сибиреязвенного микроба" (М., 1989). С этой целью готовят двухслойный
агар, используя в качестве первого слоя 1%-ный агар Дифко на 0,9%-ном растворе
хлорида натрия, который разливают в чашки Петри по 20 мл. Для второго слоя
готовят 0,7%-ный агар на 0,9%-ном растворе хлорида натрия, в который после
охлаждения вносят следующие ингредиенты: для проверки гемолитической активности
- 6% трижды стерильно отмытых в 0,9%-ном растворе хлорида натрия эритроцитов
барана; для определения протеолитической активности - желатин, казеин, бычий
сывороточный альбумин и гемоглобин в концентрации 0,4%. После полного
застывания верхнего слоя в агаровых пластинках пробойником делают по 6-7 лунок
в каждой чашке, дно которых заливают каплей расплавленного 1%-ного агара.
В лунки вносят по 0,1 мл 2-суточной
бульонной культуры изучаемых штаммов. Учет производят через 48 ч инкубации при
температуре (36 +/- 1) град. С для выявления гемолитической и через 24 ч - при
выявлении протеолитической активности. В последнем случае перед просмотром
поверхность агара обрабатывают 20%-ным раствором трихлоруксусной кислоты.
Положительные результаты соответствуют обнаружению зон просветления в агаре
вокруг лунок с культурой.
5.6.2.3. Тест на лецитиназу
Наличие или отсутствие лецитиназной
активности определяют в жидкой желточной среде или на агаре Хоттингера, в
который добавлен стерильно желток куриного яйца. В пробирки с 5 мл жидкой
желточной среды (Прилож., 1.5) засевают петлей суточную культуру и инкубируют в
термостате при (36 +/- 1) град. С. Возбудитель сибирской язвы, как правило, в
течение нескольких суток инкубирования не свертывает желток, в то время как
представители спорообразующих сапрофитов свертывают желток уже в первые сутки.
На плотной питательной среде вокруг колоний сибиреязвенного микроба не формируются
зоны ферментации желтка, в то время как вокруг колоний большинства сапрофитов,
вырабатывающих активную лецитиназу, просматривается широкая беловатая
непрозрачная зона.
5.6.2.4. Определение способности к росту
на минимальной питательной среде
Для этого готовят минимальную питательную
среду "9AT" (Приложение, 1.6). Споры изучаемых штаммов засевают на
среду "9AT" и выращивают в течение 24-48 ч при температуре (36 +/- 1)
град. С. Для контроля засевают на эту среду споры B. anthracis 81/1. Если
исследуемые штаммы не растут на этой среде через 48 ч, то их можно считать
нуждающимися в дополнительных факторах роста.
5.6.2.5. Дифференциация культур
сибиреязвенного микроба по вирулентности in vitro
Предлагаемый метод дифференциации культур
сибиреязвенного микроба по вирулентности in vitro основан на объективной
регистрации различий в продукции разными культурами капсулы и экзотоксина при
культивировании на агаре Хоттингера в воздушной атмосфере и на среде
"СОПЭК" (Прилож., 1.7) в атмосфере, обогащенной CO2. Капсулообразование
регистрируется по характерному росту на плотных средах в виде гладких слизистых
колоний, в мазках из которых при микроскопии обнаруживаются капсульные бациллы.
Учет токсинообразования ведется по визуально наблюдаемым концентрическим ореолам
иммунопреципитации в среде вокруг колоний, продуцирующих токсин.
Иммунопреципитация в данном методе является следствием взаимодействия
антитоксических антител противосибиреязвенного глобулина, введенного в состав
среды, и диффундирующих в среду компонентов токсина, который синтезируется
сибиреязвенным микробом при культивировании на среде в атмосфере с повышенным
содержанием CO2. Все это позволяет дифференцировать культуры с обычной, то есть
CO2-зависимой, CO2-независимой продукцией капсулы, бескапсульные, продуцирующие
и не продуцирующие токсин. Среди них выделяют пять групп в зависимости от
характера экспрессии капсулы и токсина, которым соответствуют следующие степени
патогенности: высоковирулентные, умеренно вирулентные, слабовирулентные,
авирулентные и апатогенные.
Для исследования готовят суспензию спор
или вегетативных клеток из суточных агаровых культур по ОСО мутности 10 ед.
ГИСК им. Л.А.Тарасевича. Взвесь наносят петлей бляшками диаметром 3-4 мм от 10
до 50 инокулятов параллельно на одну чашку со средой "СОПЭК" и одну
чашку с агаром Хоттингера. Для контроля качества среды засевают культуру
типичного по капсуло- и токсинообразованию тест-штамма 81/1, любого
бесплазмидного штамма, а также штамма с CO2-независимой продукцией капсулы.
Чашки со средой "СОПЭК"
помещают в микроанаэростат или CO2-инкубатор. Из микроанаэростата вакуумным
насосом откачивают 25% воздуха, ориентируясь на показания мановакуумметра, и
замещают его углекислым газом из баллона. В CO2-инкубаторе чашки культивируют с
10% углекислого газа. Посевы на среде "СОПЭК" выращивают при
температуре (36 +/- 1) град. С в течение 48 ч, затем переносят чашки из
микроанаэростата или CO2-инкубатора в холодильник и выдерживают в течение 1-3
сут. при 4-0 град. С. Чашки с агаром Хоттингера инкубируют при (36 +/- 1) град.
С в обычной воздушной атмосфере в течение 24 ч.
По окончании указанных сроков инкубации
(24 ч для агара Хоттингера и 48 ч для среды "СОПЭК") просматривают
чашки, регистрируя морфологию колоний. Продуцирующие капсулу культуры формируют
колонии в SM-форме - округлые, гладкие, блестящие со слизистым капсульным
веществом на поверхности. Не продуцирующие капсулу культуры растут в R-форме в
виде шероховатых, с волокнистым краем матовых колоний.
Для подтверждения факта образования
капсулы из колоний делают мазки для микроскопии, которые окрашивают раствором
Ребигера в течение 15-20 с, промывают и высушивают. Капсула окрашивается в
розовый цвет или остается неокрашенной, бактерии - в темно-фиолетовый.
По истечении 48 ч после начала инкубации
чашки со средой "СОПЭК" просматривают при естественном освещении на
черном фоне и отмечают предварительные результаты, пользуясь для этого листом
черной бумаги. Вокруг колоний, продуцирующих токсин, в среде формируются
концентрические ореолы иммунопреципитации в виде белых тонких колец. Колонии,
не продуцирующие токсин, лишены таких ореолов. После выдерживания посевов на
среде "СОПЭК" в холодильнике в течение 1-3 сут. их просматривают
повторно и проводят окончательный учет результатов.
Интерпретация результатов
Культуры относят к высоковирулентным,
если они продуцируют капсулу и токсин в атмосфере CO2 и не продуцируют капсулу
на воздухе; умеренно вирулентным, если они не продуцируют токсин, продуцируют
капсулу в атмосфере CO2 и не продуцируют ее на воздухе; слабовирулентным, если
они не продуцируют токсин и продуцируют капсулу в атмосфере CO2 и на воздухе;
авирулентным, если они продуцируют токсин, но не продуцируют капсулу;
апатогенным, если они не продуцируют ни капсулу, ни токсин.
5.6.2.6. Определение вирулентности
выделенных культур in vivo
Вирулентность выделенных культур сибиреязвенного микроба определяют
двумя методами: вычислением DCL или LD50. Для заражения животных используют
споровую взвесь, которую готовят следующим образом. Сибиреязвенную культуру
отсевают на специальные питательные среды для образования спор: агар
Гладстона, голодный пшеничный или гороховый агар и инкубируют в течение 1
сут. при (36 +/- 1) град. С, а затем в течение 4-6 сут. при (34 +/- 1)
град. С. Споры B. anthracis можно получить также высевом на агар
Хоттингера, содержащий 60% аминного азота (pH - 7,2), в течение 4 сут.
при 37 град. С. Процесс спорообразования контролируют просмотром мазков,
окрашенных по Ребигеру. При наличии 95-100% спор культуру смывают
дистиллированной водой и суспензию помещают на 2-3 сут. в холодильник
для лизиса оставшихся вегетативных палочек. Для определения концентрации
спор готовят десятикратные разведения полученной взвеси с использованием
в качестве разводящей жидкости 0,10-0,05%-ный раствор Твина-80 на
дистиллированной воде и делают высев в объеме 0,1 мл из пробирок с
-6 -7
разведениями 10 и 10 на 3 чашки (каждое разведение) с агаром
Хоттингера. Посевы инкубируют при (36 +/- 1) град. С в течение 18-20 ч. На
следующий день подсчитывают выросшие колонии и соответственно вычисляют
концентрацию спор в исходной взвеси, затем готовят для заражения
соответствующие разведения на 0,9%-ном растворе хлорида натрия.
Для определения LD50 чаще всего
используют белых беспородных мышей весом 18-20 г. Споровые взвеси, содержащие
1, 10, 100, 1000 и 10000 спор, вводят подкожно в объеме 0,5 мл, используя 4-6
животных на каждую дозу. За зараженными животными наблюдают в течение 10 сут.,
отмечают в каждой группе павших от сибиреязвенной инфекции животных.
Статистическую обработку полученных результатов проводят по методу Рида и Менча
или Кербера.
Для определения DCL используют морских
свинок, кроликов и три заражающие дозы - 100, 1000 и 10000 спор. Каждой дозой
инфицируют не менее трех животных. Наблюдение за ними проводят до 10 суток. Из
органов павших животных делают мазки-отпечатки для бактериоскопии и посевы на
соответствующие питательные среды для установления специфичности гибели
животных.
Культуры возбудителя сибирской язвы
считаются вирулентными, если значение LD50 для белых мышей и морских свинок или
DCL для кроликов не превышает 10000 спор.
5.6.2.7. Идентификация штаммов
сибиреязвенного микроба с атипичным капсулообразованием
Из всех выросших колоний, не изменивших
своего цвета при обработке парами аммиака, как шероховатых (I, III тип), так и
гладких слизистых (II тип) делают мазки и окрашивают их по Ребигеру или
сибиреязвенными соматической, капсульно-соматической люминесцирующими
сыворотками.
Для дальнейшего исследования отбирают колонии, в мазках из которых
выявляются палочки, расположенные длинными цепочками с типичной
морфологией. Палочки из колоний II типа могут быть окружены капсулой,
+ +
окрашенной в розовый цвет при окраске по Ребигеру, или светиться на 3 , 4
при окраске капсульно-соматической люминесцирующей сывороткой. Из
отобранных колоний делают пересевы в пробирки с МПБ и на чашки с 1%-ным
бикарбонатно-сывороточным агаром. Последние выращивают при 5-50% CO2, как
уже описано выше. Результаты учитывают через 24 ч инкубации при (36 +/- 1)
град. С. В бульоне отмечают придонный рост в виде "комочка ваты" с
сохранением прозрачности над ним, характерный для штаммов I и III типа.
Штаммы II типа вызывают диффузное помутнение среды. На 1%-ном
бикарбонатно-сывороточном агаре штаммы I и II типа растут в SM-форме
в виде крупных слизистых колоний. Из колоний делают мазки с последующей
их окраской на наличие капсулы. В мазках обнаруживают палочки, окруженные
капсулой. Штаммы III типа растут на этой среде в R-форме, капсула в мазках
не обнаруживается.
Из культур на 1%-ном бикарбонатно-сывороточном
агаре готовят взвесь микробов в 0,9%-ном растворе натрия хлорида, которой
заражают белых мышей подкожно в объеме 0,5 мл во внутреннюю поверхность бедра.
Павших мышей вскрывают, отмечают характерную патологоанатомическую картину, делают
мазки-отпечатки и высевы из органов и места введения. Выживших мышей забивают
на 10 сут. и исследуют аналогично. В мазках-отпечатках от мышей, павших после
заражения штаммами I и II типа, обнаруживаются капсульные клетки
сибиреязвенного микроба и обильный рост микроба на питательных средах из всех
органов и места введения. В мазках от мышей, зараженных штаммами III типа,
клетки микроба наблюдаются редко, в основном из места введения, и они лишены
капсулы, а из органов и места введения вырастают единичные колонии в R-форме. В
месте введения культур штаммов сибиреязвенного микроба I и III типов на 2-3
сут. развивается специфический студенистый геморрагический отек подкожной
клетчатки, формирующийся под действием отечной фракции сибиреязвенного
экзотоксина. Дальнейшая идентификация выделенных культур атипичных штаммов
проводится по методам, описанным выше.
5.6.2.8. Определение MLVA-генотипа
штаммов сибиреязвенного микроба
Определение MLVA-генотипа культур
сибиреязвенного микроба целесообразно проводить по схеме и с использованием
метода, описанного P. Keim et al. (2000). Такое генетическое типирование
позволяет дифференцировать штаммы, установить их происхождение, осуществлять
мониторинг в процессе эпидемиологического анализа вспышки. Исследование
проводится в референс-лабораториях.
Временной график лабораторных
исследований на сибирскую язву приведен в Прилож. 8.
6. Выдача
заключений по результатам лабораторного
исследования на сибирскую язву
После проведения соответствующих этапов
лабораторного исследования на сибирскую язву в определенные сроки можно давать
следующие заключения о его результатах. В расчетные сроки не включено время,
необходимое для подготовки проб (разбор проб и предварительная очистка,
фильтрование, разведение или концентрирование материала, разделение на
аликвоты).
6.1.
Предварительные результаты специфической индикации
При исследовании патологического
материала от людей и животных:
- через 2-6 ч, по результатам микроскопии
и МФА с капсульно-соматической люминесцирующей сывороткой;
- через 8-12 ч, по результатам ПЦР;
- через 2-6 ч, по результатам реакции
преципитации по Асколи.
При исследовании секционного материала от
трупов людей и животных, а также кож, шкур, шерсти, мяса и мясопродуктов:
- через 2-6 ч, по результатам реакции
преципитации по Асколи;
- через 2-6 ч, по результатам МФА с
антиспоровой люминесцирующей сывороткой;
- через 8-12 ч, по результатам ПЦР.
При исследовании материала из объектов
внешней среды:
- через 2-6 ч, по результатам МФА с
антиспоровой люминесцирующей сывороткой;
- через 2-6 ч, по результатам РИГА;
- через 8-12 ч, по результатам ПЦР.
6.2. Окончательные
результаты специфической индикации
При исследовании любого материала,
подозрительного на зараженность возбудителем сибирской язвы, через 48 ч на
основании результатов:
- ПЦР с материалом из типичных колоний;
- МФА при окраске люминесцирующей
соматической сибиреязвенной сывороткой культуры из типичных колоний.
6.3. Окончательные
результаты полного лабораторного анализа
При исследовании любого материала,
подозрительного на зараженность возбудителем сибирской язвы, через 2-10 сут. на
основании:
- морфологии колоний на питательных
средах, в том числе и дифференциально-диагностической, и характера роста в МПБ;
- морфологии в мазках из выросших
подозрительных колоний, МПБ;
- патологоанатомической картины у забитых
на 2-3 сутки или павших белых мышей, обнаружения капсулы в мазках-отпечатках из
органов биопробных животных и морфологии колоний при посеве органов на
питательном агаре;
- характера роста колоний на 1%-ном
бикарбонатно-сывороточном агаре и морфологии клеток в мазках, приготовленных из
колоний или взвеси микробов, выросших на жидкой среде ГКИ;
- результатов теста с сибиреязвенным
бактериофагом;
- результатов теста на щелочную
фосфатазу;
- результатов теста на гемолиз на агаре с
дефибринированной кровью барана;
- результатов теста на лецитиназу;
- результатов теста на подвижность;
- результатов теста "жемчужного
ожерелья";
- результатов аллергической реакции с
антраксином (через 24 и 48 ч);
- результатов МФА (непрямой метод) с
сывороткой больного.
6.4. Диагноз
сибирской язвы
Диагноз сибирской язвы у человека считают
установленным при наличии соответствующей клинической картины,
эпидемиологического анамнеза, подтвержденных одним из нижеперечисленных
способов:
- выделение из патологического материала
культуры B. anthracis, гибель хотя бы одного зараженного лабораторного
животного и выделение из его органов культуры со свойствами, характерными для
возбудителя сибирской язвы;
- выделение вирулентной культуры B. anthracis
из предполагаемого источника или фактора передачи;
- положительная антраксиновая проба.
Если по прошествии 72 ч положительные
результаты не получены, окончательное отрицательное заключение может быть
сделано не ранее 10 сут. после заражения биопробных животных (отрицательной
биопробы).
6.5. Хранение
штаммов B. anthracis
Сибиреязвенную культуру отсевают на
специальные питательные среды для образования спор: МПА, агар Хоттингера с 60%
аминного азота (pH = 7,2), голодный пшеничный или гороховый агар, и выращивают
в термостате при температуре 37 град. С в течение 4-7 суток. Процесс
спорообразования контролируют просмотром мазков, окрашенных по Ребигеру. При
наличии 95-100% спор культуру смывают дистиллированной водой и отстаивают в
условиях холодильника в течение 3 сут. для лизиса оставшихся вегетативных
клеток. Затем надосадочную жидкость с помощью пипетки осторожно удаляют, а
споры заключают в 30-50%-ный химически чистый глицерин. В запаянных ампулах в
холодильнике обработанные таким образом споры могут длительно сохраняться в
течение нескольких лет, не изменяя концентрации и своих биологических свойств.
7. Режим работы в
лабораториях, работающих с возбудителем
сибирской язвы
Все работы с возбудителем сибирской язвы
должны проводиться в строгом соответствии с санитарно-эпидемиологическими
правилами СП 1.3.1285-03 "Безопасность работы с микроорганизмами I-II
групп патогенности (опасности)". Работы, связанные с высоким риском
образования аэрозоля (центрифугирование, гомогенизация, измельчение, интенсивное
встряхивание, вскрытие объектов с зараженным материалом и т.п.), проводят в
отдельных боксовых помещениях или боксах биологической безопасности III класса.
Приложение N 1
ПИТАТЕЛЬНЫЕ СРЕДЫ, ПРИМЕНЯЕМЫЕ ДЛЯ ВЫДЕЛЕНИЯ И
ИДЕНТИФИКАЦИИ
ВОЗБУДИТЕЛЯ СИБИРСКОЙ ЯЗВЫ
1.1. Селективная
дифференциально-диагностическая среда
с натрия фенолфталеинфосфатом
В расплавленный питательный агар
добавляют полимиксин сульфат М и триметоприм из расчета 25 мкг/мл, хорошо
перемешивают. Перед розливом в чашки Петри в остуженную до 45-50 град. С среду
добавляют раствор натрия фенолфталеинфосфата, предварительно прогретого при 56
град. С в течение 20 мин., до конечной концентрации 0,01%. После перемешивания
среду разливают в чашки Петри и подсушивают в течение 1,5 ч с открытыми
крышками. Чашки с агаром можно хранить в холодильнике 2-3 суток.
1.2.
Бикарбонатно-сывороточный агар 1%-ный
Предварительно готовят 10%-ный раствор
NaHCO3. Для этого 10 г пищевой соды растворяют в 100 мл стерильной
дистиллированной воды при легком подогревании на пламени спиртовки. Затем в 100
мл расплавленного и остуженного до 50 град. С агара Хоттингера добавляют 10 мл
10%-ного раствора соды, 10%-ной инактивированной при 56 град. С в течение 30
мин. лошадиной сыворотки. После розлива в чашки Петри и подсушивания агар можно
использовать для посевов. Хранить агар не следует.
1.3. Среда ГКИ
Среда ГКИ состоит из 60 мл раствора
Хенкса и 40 мл бычьей (лошадиной) сыворотки, инактивированной при 56 град. С в
течение 30 мин. Компоненты тщательно перемешивают, доводят бикарбонатом натрия
pH до 7,2. Полученную среду стерильно разливают в пробирки по 2 мл и закрывают
стерильными резиновыми пробками. Среда может храниться при 4 град. С длительное
время.
1.4. Кровяной агар
У барана из яремной вены кровь стерильно
забирают в дефибринатор (флакон со стеклянными бусами) при постоянном его
круговом покачивании. После окончательного формирования на бусах плотного
сгустка фибрина (15-20 мин.) кровь фильтруют через стерильную марлевую
салфетку. Дефибринированную кровь добавляют в количестве 3-5% в расплавленный и
остуженный до 45 град. С агар Хоттингера, который сразу же разливают в чашки
Петри.
1.5. Жидкая
желточная среда Дрожевкиной
Состоит из 1 части куриного желтка и 9
частей 0,9%-ного раствора хлорида натрия. Приготовление и розлив производят
стерильно без последующей стерилизации. Помещают на 2 сут. при 37 град. С для
проверки на стерильность.
1.6. Минимальная
среда "9AT"
Для приготовления среды "9AT"
необходимы следующие ингредиенты (в г/л):
K2HPO4 х 3H2O - 4,5
KH2PO4 - 0,5
(NH4)2SO4 - 2,0
MgSO4 х 7H2O - 0,025
MnSO4 х H2O - 0,015
FeSO4 х 7H2O - 0,015
CaCl2 х 2H2O - 0,05
C6H5O7Na3 х 3H2O - 0,5
d-глюкоза - 4,0
l-аланин - 0,02
l-гистидин - 0,02
l-глутаминовая кислота - 0,02
глицин - 0,02
l-лизин - 0,02
l-метионин - 0,02
l-пролин - 0,02
l-серин - 0,02
l-треонин - 0,02
тиамин - 0,001
агар-агар "Дифко" - 13
вода дистиллированная - до 1 л.
1.7. Среда
"СОПЭК"
Готовят среду путем растворения
ингредиентов в 425 мл дистиллированной воды в следующем соотношении (г):
l-аланин - 0,035
l-аргинин HCl - 0,200
l-аспарагиновая кислота - 0,250
l-валин - 0,240
l-гистидин HCl - 0,074
глицин - 0,090
l-глутамат натрия - 0,820
l-изолейцин - 0,230
l-лейцин - 0,300
l-лизин - 0,300
l-метионин - 0,100
l-пролин - 0,060
l-серин - 0,310
l-треонин - 0,160
l-тирозин - 0,200
l-триптофан - 0,047
l-фенилаланин - 0,170
l-цистин - 0,034
аденин - 0,003
урацил - 0,002
тиамин HCl - 0,001
CaCl2 - 0,008
MgSO4 х 7H2O - 0,026
MnSO4 х H2O - 0,002
FeSO4 х H2O - 0,002
K2HPO4 х 3H2O - 3,920
NaHCO3 - 8,0
d (+) глюкоза - 2,5.
Значение pH готовой среды составляет 8,0.
Полученный раствор питательной основы
среды стерилизуется фильтрацией через мембранный фильтр. Навеску агарозы 15 г
расплавляют в 500 мл дистиллированной воды и стерилизуют автоклавированием при
121 град. С в течение 20 мин. К расплавленной и охлажденной до 50 град. С
агарозе стерильно добавляют подогретый до 50 град. С раствор питательной основы
в объеме 425 мл и противосибиреязвенный глобулин жидкий в объеме 75 мл,
перемешивают и разливают в чашки Петри по 10-12 мл.
1.8. Транспортная
среда N 1
1-й вариант: NaCl - 137 М, KCl - 2,7 М,
NaH2PO4 - 10 М, K2HPO4 - 2 М, сыворотка крупного рогатого скота - 20%;
2-й вариант: сахароза - 0,218 М, KH2PO4 -
0,0038 М, K2HPO4 - 0,0072 М, БСА - 1%.
1.9. Транспортная
среда N 2 (ESP)
Саркозил - 1%; ЭДТА - 0,05 М; свободная
от нуклеаз проназа Е - 1 мг/мл.
Приложение N 2
ПРИГОТОВЛЕНИЕ РАБОЧИХ РАСТВОРОВ И РЕАГЕНТОВ
2.1. Фиксирующая
жидкость для фиксации мазков
Фиксацию мазков проводят в соответствии с
"Методическими рекомендациями по использованию этилового спирта с 3%
перекиси водорода для фиксации на предметном стекле возбудителя сибирской
язвы" (М., 1984). Для приготовления фиксирующей жидкости с содержанием
3%-ного раствора перекиси водорода во флакон наливают 180 мл этилового спирта и
20 мл 30%-ного пергидроля. Содержание перекиси водорода в пергидроле необходимо
определять по методике, изложенной в Государственной фармакопее СССР (М.,
1968). Содержание перекиси водорода в рабочем растворе удобно проверять с
применением полосок "ДЕЗИКОНТ-ПВ-01" индикаторных химических
одноразовых для экспресс-контроля концентрации перекиси водорода в диапазоне
3-6% фирмы ВИНАР или других фирм, производящих аналогичную продукцию.
Фиксирующую жидкость можно не менять в течение месяца, при этом флакон должен
закрываться притертой пробкой. Для хранения лучше использовать флакон из
темного стекла. Флакон из обычного стекла необходимо держать в темном ящике
(ящик лабораторного стола, холодильник). Приготовленные мазки из культур
высушивают на воздухе, затем опускают во флакон с фиксирующей жидкостью. Через
30 мин. стекла с мазками извлекают и просушивают на воздухе. Держать мазки
более 30 мин. в фиксирующей жидкости нежелательно. Можно хранить фиксированные
мазки в закрытой чашке Петри в холодильнике.
2.2. Раствор
Ребигера
Растворяют 15-20 г генцианвиолета в 100
мл 40%-ного формалина. Раствор выдерживают при комнатной температуре в течение
нескольких часов, после чего фильтруют.
2.3. Карболовый
фуксин Циля
Тщательно растирают в ступке 1 г
основного фуксина и 5 г кристаллической карболовой кислоты с несколькими
каплями глицерина. Во время растирания при постоянном помешивании понемногу приливают
10 мл 95 град.-ного этилового спирта и 100 мл дистиллированной воды. Краска
готова к употреблению через 2-3 дня после изготовления, сохраняется длительно.
2.4. Раствор
Твина-80 0,1-0,05%-ный и определение
концентрации жизнеспособных спор
Определение концентрации жизнеспособных спор проводят в соответствии с
методическими рекомендациями "Использование 0,05-0,10%-ного раствора
Твина-80 как разводящей жидкости для определения концентрации спор
сибиреязвенного микроба" (М., 1986). 1-3 мл Твина-80 отливают в пробирку
и греют на водяной бане при температуре 40-50 град. С в течение 5-10 мин.
Затем во флакон, содержащий 100 мл стерильной дистиллированной воды,
добавляют 1 или 2 капли прогретого Твина-80 и содержимое тщательно
перемешивают. Разводящая жидкость готова для употребления и может
использоваться в течение 3-5 дней. В 7 пробирок вносят по 4,5 мл
разводящей жидкости. Делают предварительные 10-кратные разведения споровой
взвеси с переносом в пробирки по 0,5 мл с помощью мерных 1 мл пипеток. На
каждое разведение используют новую пипетку. При перемешивании в разводящей
жидкости не следует допускать образования больших пузырей, так как это
-6 -7
может отразиться на точности подсчета. Из разведений 10 и 10 по 0,1 мл
взвеси высевают на поверхность подсушенного агара Хоттингера. Для каждого
разведения берут не менее 3 чашек. Суспензию распределяют по поверхности
агара покачиванием чашек. После впитывания суспензии чашки выдерживают в
термостате при 37 град. С в течение 18-20 ч. Среднее значение количества
выросших колоний, умноженное на 10 и на кратность разведения, составляет
значение концентрации живых спор в исходной взвеси. Суспензию спор,
приготовленную на Твине-80, не рекомендуется использовать для заражения или
вакцинации животных. Для этих целей вновь готовят разведение спор на
0,9%-ном растворе хлорида натрия исходя из концентрации жизнеспособных
спор, установленных описанным способом.
2.5. Лизирующий
буфер с гуанидинтиоцианатом (ЛБ)
На 50 мл: гуанидинтиоцианат - 35,4 г,
тритон Х-100 - 1,3 г, 0,5 М раствор ЭДТА, pH 7,4-4,4 мл, 0,1 М раствор
Трис-HCl, pH 6,4 - до 50 мл. С помощью 10 N раствора гидроокиси натрия pH
готового раствора доводят до 7,4. Буфер хранят в полипропиленовой посуде при
комнатной температуре до 3 мес., при 4-10 град. С - до 6 мес.
2.6. Раствор для
первой отмывки (ОР-1)
На 50 мл: гуанидинтиоцианат (4 М) - 23,6
г, 0,1 М раствор Трис-HCl - до 50 мл. Буфер хранят в полипропиленовой посуде
при комнатной температуре до 3 мес., при 4-10 град. С - до 6 мес.
2.7. Раствор для
второй отмывки (ОР-2)
1 М раствор Трис-HCl, pH 8,5-1 мл, 5 М
раствор натрия хлорида - 1 мл, спирт этиловый - 50 мл, дистиллированная вода -
50 мл. Буфер хранят в полипропиленовой посуде при комнатной температуре до 3
мес. при 4-10 град. С - до 6 мес.
2.8. Суспензия
сорбента (СС)
Готовят 50%-ную (вес/объем) суспензию
силикагеля (SiO2) с размером частиц 0,5-10 мкм в деионизованной воде.
2.9. Элюирующий
буфер (ЭБ), ТЕ буфер, pH 7,4
На 100 мл - 1 М раствор Трис-HCl, pH 8,0
- 1 мл, 0,5 М раствор ЭДТА - 0,2 мл, деионизованная вода - до 100 мл. Буфер
хранят в полипропиленовой посуде при 4-10 град. С до 6 мес.
2.10. 0,5 М раствор
ЭДТА, pH 8,0
Помещают 18,61 г соли в химический стакан
на 100 мл, добавляют 80 мл дистиллированной воды, интенсивно размешивают на
магнитной мешалке и доводят pH до 8,0 +/- 0,1 с помощью натрия гидроокиси.
Раствор хранят в темной полипропиленовой посуде при температуре (4 +/- 2) град.
С до 3 мес.
2.11. 1 М раствор
трис-HCl, pH 8,0 +/- 0,1
Навеску трис-(оксиметил)-аминометана -
6,5 г помещают в химический стакан на 50 мл, добавляют 25 мл дистиллированной
воды. После полного растворения соли доводят дистиллированной водой до 50 мл и
выставляют pH 8,0 +/- 0,1 с помощью концентрированной кислоты соляной. Раствор
хранят при температуре (4 +/- 2) град. С до 3 мес.
2.12. 0,1 М раствор
трис-HCl, pH 6,4 +/- 0,1
Навеску трис-(оксиметил)-аминометана -
1,21 г помещают в химический стакан на 100 мл, добавляют 50 мл дистиллированной
воды. После полного растворения соли доводят дистиллированной водой до 100 мл.
Доводят pH до 6,4 +/- 0,1 с помощью концентрированной соляной кислоты. Раствор
хранят при температуре (4 +/- 2) град. С до 3 мес.
2.13. 5 М раствор
натрия хлорида
Навеску натрия хлорида - 2,922 г помещают
в химический стакан на 50 мл и добавляют 8 мл дистиллированной воды. Раствор
хранят в стеклянной посуде при температуре (4 +/- 2) град. С до 3 мес.
2.14. 10 N раствор
натрия гидроокиси
Навеску натрия гидроокиси - 40 г помещают
в мерную колбу на 100 мл, добавляют 50 мл дистиллированной воды. После полного
растворения натрия гидроксида доводят дистиллированной водой до 100 мл. Раствор
хранят в непрозрачной полипропиленовой посуде при комнатной температуре до 6
мес.
Приложение N 3
КРИТЕРИИ ИНТЕРПРЕТАЦИИ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ
B. ANTHRACIS: ПОГРАНИЧНЫЕ ЗНАЧЕНИЯ ДИАМЕТРОВ ЗОН
ПОДАВЛЕНИЯ
РОСТА (ММ) И ВЕЛИЧИН МПК (МГ/Л) АНТИБАКТЕРИАЛЬНЫХ
ПРЕПАРАТОВ
|
Антибактериальный
|
Содержание |
Диаметр зон |
Значение МПК, |
||
|
S* |
R* |
S* |
R* |
||
|
Бензилпенициллин |
10 |
>= 26 |
<= 16 |
<= 0,1 |
>= 1,0 |
|
Ампициллин |
10 |
>= 27 |
<= 16 |
<= 0,1 |
>= 1,0 |
|
Цефазолин |
30 |
>= 29 |
<= 16 |
<= 0,2 |
>= 1,0 |
|
Цефалексин |
30 |
>= 29 |
<= 16 |
<= 1,0 |
>= 4,0 |
|
Эритромицин |
15 |
>= 24 |
<= 16 |
<= 1,0 |
>= 4,0 |
|
Азитромицин |
30 |
>= 24 |
<= 16 |
<= 1,0 |
>= 4,0 |
|
Линкомицин |
15 |
>= 23 |
<= 16 |
<= 1,0 |
>= 4,0 |
|
Канамицин |
10 |
>= 19 |
<= 16 |
<= 1,0 |
>= 4,0 |
|
Гентамицин |
10 |
>= 23 |
<= 16 |
<= 1,0 |
>= 4,0 |
|
Стрептомицин |
10 |
>= 18 |
<= 16 |
<= 1,0 |
>= 4,0 |
|
Амикацин |
30 |
>= 23 |
<= 16 |
<= 1,0 |
>= 4,0 |
|
Тетрациклин |
30 |
>= 23 |
<= 16 |
< 0,1 |
>= 1,0 |
|
Доксициклин |
10 |
>= 23 |
<= 16 |
< 0,1 |
>= 1,0 |
|
Рифампицин |
5 |
>= 20 |
<= 13 |
<= 0,1 |
>= 1,0 |
|
Ципрофлоксацин |
5 |
>= 17 |
<= 15 |
< 0,1 |
>= 1,0 |
|
Офлоксацин |
5 |
>= 19 |
<= 15 |
< 0,1 |
>= 1,0 |
|
Пефлоксацин |
10 |
>= 19 |
<= 15 |
< 0,1 |
>= 1,0 |
|
Ломефлоксацин |
10 |
>= 20 |
<= 15 |
< 0,1 |
>= 1,0 |
|
Меропенем |
10 |
>= 26 |
<= 15 |
< 0,1 |
>= 1,0 |
|
Имипенем |
- |
- |
- |
< 0,1 |
>= 1,0 |
Примечание: S* - чувствительный, R* -
устойчивый.
Приложение N 4
(справочное)
ОТЛИЧИТЕЛЬНЫЕ ПРИЗНАКИ ШТАММОВ СИБИРЕЯЗВЕННОГО
МИКРОБА РАЗЛИЧНЫХ ТИПОВ
┌────────────────────────┬───────────────────────────────────────┐
│ Признаки │ Типы по Thorne │
│ ├────────────┬───────────┬──────────────┤
│ │ I │ II │ III │
├────────────────────────┼────────────┼───────────┼──────────────┤
│ 1 │ 2 │ 3 │ 4 │
├────────────────────────┴────────────┴───────────┴──────────────┤
│ Морфология колоний │
├────────────────────────┬────────────┬───────────┬──────────────┤
│На агаре Хоттингера при │R-форма │SM-форма │R-форма │
│выращивании на воздухе │ │ │ │
├────────────────────────┼────────────┼───────────┼──────────────┤
│На 1%-ном бикарбонатно- │SM-форма │SM-форма │R-форма │
│сывороточном агаре в │ │ │ │
│атмосфере с 10-50% CO2 │ │ │ │
├────────────────────────┴────────────┴───────────┴──────────────┤
│ Капсулообразование │
├────────────────────────┬────────────┬───────────┬──────────────┤
│На агаре Хоттингера при │Отсутствует │Происходит │Отсутствует │
│выращивании на воздухе │ │ │ │
├────────────────────────┼────────────┼───────────┼──────────────┤
│На 1%-ном бикарбонатно- │Происходит │Происходит │Отсутствует │
│сывороточном агаре в │ │ │ │
│атмосфере с 10-50% CO2 │ │ │ │
├────────────────────────┼────────────┼───────────┼──────────────┤
│В организме животных │Происходит │Происходит │Отсутствует │
├────────────────────────┼────────────┼───────────┼──────────────┤
│Рост в бульоне │Бульон │Бульон │Бульон │
│Хоттингера │прозрачный, │мутноватый,│прозрачный, │
│ │придонный │придонный │придонный рост│
│ │рост в виде │рост в виде│в виде │
│ │"комочка │"комочка │"комочка ваты"│
│ │ваты" │ваты" │ │
├────────────────────────┴────────────┴───────────┴──────────────┤
│ Вирулентность │
├────────────────────────┬────────────┬───────────┬──────────────┤
│Для белых мышей │При зараже- │При зараже-│Вызывает │
│ │нии дозами │нии дозами │гибель на 1- │
│ │ 4 │ 4 │10 сут. в │
│ │1 - 10 спор│1 - 10 │ 4 │
│ │вызывает │спор вызы- │дозах >= 10 │
│ │гибель на │вает гибель│спор, в мень- │
│ │1-5 сут. │на 1-5 │ших дозах - │
│ │ │сут. │отек подкожной│
│ │ │ │клетчатки в │
│ │ │ │месте введения│
│ │ │ │на 2-3 сут. │
├────────────────────────┼────────────┼───────────┼──────────────┤
│Для морских свинок │При зараже- │При зараже-│Вызывает ги- │
│ │нии дозами │нии дозами │бель единичных│
│ │ 4 │ 4 │особей от доз │
│ │1 - 10 спор│1 - 10 │ 4 │
│ │вызывает │спор вызы- │свыше 10 │
│ │гибель на │вает гибель│спор, в мень- │
│ │1-5 сут. │на 1-5 │ших дозах - │
│ │ │сут. │отек подкожной│
│ │ │ │клетчатки в │
│ │ │ │месте введения│
│ │ │ │на 2-3 сут. │
├────────────────────────┼────────────┼───────────┼──────────────┤
│Для кроликов │При зараже- │Не вызывает│Не вызывает │
│ │нии дозами │гибели при │гибели при за-│
│ │ 4 │заражении │ражении дозами│
│ │1 - 10 спор│дозами до │ 6 │
│ │вызывает │ 6 │до 10 спор │
│ │гибель на │10 спор │ │
│ │1-5 сут. │ │ │
└────────────────────────┴────────────┴───────────┴──────────────┘
Приложение N 5
(справочное)
ДИАГНОСТИЧЕСКИЕ ПРЕПАРАТЫ, ПРИМЕНЯЕМЫЕ ДЛЯ
ИНДИКАЦИИ
И ИДЕНТИФИКАЦИИ ВОЗБУДИТЕЛЯ СИБИРСКОЙ ЯЗВЫ
В целях индикации и идентификации
возбудителя сибирской язвы могут быть использованы диагностические препараты
перечисленных ниже или других фирм, производящих аналогичную продукцию.
|
N |
Наименование
препарата |
Техническая
документация |
Производитель |
|
1 |
2 |
3 |
4 |
|
1. |
Глобулин |
ФС
42-3770-99 |
Киров, НИИМ МО
РФ |
|
2. |
Диагностикум |
ФСП
42-0095-1128-01 |
Киров, НИИМ МО
РФ, |
|
3. |
Иммуноглобулины |
ФС
42-3640-98 |
Москва, ИЭМ |
|
4. |
Бактериофаг
Fah-ВНИИВВиМ |
ТУ
10-09-39-90 |
ГНУ ВНИИВВиМ |
|
5. |
Тест-система
для |
ТУ
8895-007-01898109-07, |
Саратов,
ФГУЗ |
|
6. |
Набор для
выделения ДНК |
На регистрации в
ГИСК |
Саратов,
ФГУЗ |
|
7. |
Набор реагентов
для |
ТУ
9398-001-01897593-07, |
Москва, ФГУН
"ЦНИИ |
|
8. |
Комплект
реагентов для |
Регистрационное |
Москва, ФГУН
"ЦНИИ |
|
9. |
Иммуноглобулины |
Экспериментально- |
Ставрополь,
ФГУЗ |
|
10. |
Питательная
среда |
ТУ
9398-055-78095326-07, |
Оболенск,
ФГУН |
Приложение N 6
(справочное)
УСТОЙЧИВОСТЬ B. ANTHRACIS К ФИЗИЧЕСКИМ И
ХИМИЧЕСКИМ ФАКТОРАМ
Возбудитель сибирской язвы в зависимости
от биологической формы существования обладает различной устойчивостью к
неблагоприятным факторам внешней среды. Микроб в вегетативной форме
характеризуется обычной резистентностью, свойственной другим бактериям. Споры
возбудителя отличаются исключительной устойчивостью. Они остаются
жизнеспособными при воздействии низких температур - замораживание в жидком
азоте (при минус 190 град. С) не нарушает их жизнедеятельности. Споры
выдерживают кипячение в воде до 30 мин., действие текучего пара - до 12 мин.,
сухого жара при температуре 120 град. С - до 2 ч. Прямой солнечный свет убивает
споры только через 4-20 суток. Этиловый спирт в концентрации 40, 70 и 96% является
ненадежным средством дезинфекции материала, содержащего споры. Режимы
обеззараживания материала, содержащего споры сибиреязвенного микроба,
представлены в санитарно-эпидемиологических правилах СП 1.3.1285-03
"Безопасность работы с микроорганизмами I-II групп патогенности
(опасности)", а также в сборнике правил санитарных СП 3.1.084-96 и
ветеринарных ВП 13.3.4.1100-96 "Профилактика и борьба с заразными
болезнями, общими для человека и животных" (М., 1996). В качестве средств
и методов дезинфекции, используемых при работе с возбудителем сибирской язвы,
утверждены:
- активированный осветленный раствор
хлорной или белильной термостойкой извести с концентрацией от 4 до 20%;
- растворы перекиси водорода с
концентрацией 3-10% в сочетании с 0,1-0,5% моющего средства или 1% муравьиной
кислоты;
- хлорамин Б (1-4%);
- кальция гипохлорит нейтральный (15 и
20%);
- двуосновная соль гипохлорита кальция
(4%);
- ДП-2 (1,2 и 3%);
- Клорсепт [1,5% по активному хлору
(АХ)];
- Тепсихлор (5 и 3,5% по АХ
активированный);
- Пресепт (1,68% по АХ);
- ПВК (2, 3, 4% по перекиси водорода);
- Велтолен (2,5% при 50-55 град. С);
- Велтодез (2,5 и 5% при 50-55 град. С);
- Велтолен-экстра (5 и 8% при 50-55 град.
С);
- Септодор-форте (5% при 50-55 град. С,
10%);
- Никадез (5 и 15%);
- Гамма-Д (10 и 12%);
- РИК-Д (8%);
- формалин (20 и 40%, 5 и 0,2% с 0,5%
мыла);
- едкий натр (10% при температуре 70
град. С);
- кипячение в течение 60 мин. (вода,
2%-ный раствор пищевой соды, 2%-ный раствор кальцинированной соды);
- обработка водяным насыщенным паром под
давлением (автоклавирование) 0,20 МПА (2,0 кгс/кв. см) в течение 90 мин.;
- прокаливание;
- сжигание.
Приложение N 7
ИЛЛЮСТРАЦИИ К МЕТОДИЧЕСКИМ УКАЗАНИЯМ
"ЛАБОРАТОРНАЯ
ДИАГНОСТИКА И ОБНАРУЖЕНИЕ ВОЗБУДИТЕЛЯ СИБИРСКОЙ
ЯЗВЫ"
┌────────────────┐ ┌───────────────────┐ ┌─────────────┐ ┌─────────────────────────────┐
│ Образцы │ │ ЛЮДИ │<──────┤ Проба ├────>│ ЖИВОТНЫЕ │
│ из объектов │ ├───────────────────┤<───┐ │с антраксином│ ├─────────────────────────────┤
│окружающей среды│ │Материал от больных│ │ └─────────────┘ │ Материал от больных │
│ │ │ и трупов людей │ └──────┬───┐ ┌─────┤ и трупов животных │
└─────┬───┬─┬───┬┘ └───────┬─────────┬─┘ │МФА│ │ └──────┬────────┬────────┬────┘
│ │ │ \/ │ │ │ИФА│ │ │ │ │
│ │ │ ┌────┐ │ │ └───┘ │ ┌──────┴─────┬──┴───┬────┴────┐
│ │ │ │РНГА│ │ │ │ │ Мясо и │Кожи, │ Старый, │
│ │ │ └────┘ │ │ │ │мясопродукты│шкуры,│загнивший│
│ │ │┌──────────────┴────┐ ┌─┴───────────────────────┴───┐ │ │шерсть│ трупный │
│ │ ││Секционный материал│ │ Патологический материал │ │ │ │материал │
│ │ │└──────────┬─────┬──┘ └┬───────────────────────────┬┘ └─┬──────────┴┬──┬──┴─┬──────┬┘
│ │ \/ │ │ │ │ │ │ │ │ │
│ │┌───────────┐│ │ │ ┌───────────┐ │ │ │ │ \/ │
│ ││Микроскопия││ │ │ │Микроскопия│ │ ┌──┘ \/ │ ┌───────┐ │
│ ││мазков, МФА││ │ ├──────>│мазков, МФА│<──────┼─┘┌──────────────┐ │ │Реакция│ │
│ │└───────────┘│ │ │ └───────────┘ │ │ Прогревание │ │ │Асколи │ │
│ \/ │ │ │ ┌─────────────────┐ │ │при 80 град. С│ │ └───────┘ \/
│ ┌───────────┐ │ │ ├───>│ ПЦР │<───┤ │ 20 мин. │ │ ┌───┐
│ │Прогревание│ │ │ │ └─────────────────┘ │ └─┬────────────┘ ├───────>│ПЦР│
│ │ при 80 │ │ │ │ /\ ┌───────────┐ │ │ │ └───┘
│ │ град. С │ │ │ │ │ │Микроскопия│ │ │ │
│ │ 20 мин. │ │ \/ │ │ │мазков, МФА│ │ │ │
\/ └────────┬──┘ │ ┌───────┐ │ │ └───────────┘ │ │ │
┌───┐ │ │ │Реакция│<─┤ │ /\ │ │ │
│ПЦР│ │ │ │Асколи │ │ ┌───┴──────┴──────────┐ │ │ │
└───┘ │ │ └───────┘ │ │Посев на селективный │ │ │ │
├─────┼────────────┼─>│дифференциально- │<─┼────┼──────────────┘
│ │ │ │диагностический агар,│ │ │
│ │ │ │агар Хоттингера │ │ │
│ │ │ └──────────┬──────────┘ │ │
│ │ │ \/ │ │
│ │ │ ┌─────────────────────┐ │ │
│ │ │ │Посев на сектора МПА,│ │ │
│ │ │ │агара Хоттингера, МПБ│ │ │
│ │ │ └──────────┬──────────┘ │ │
│ │ │ /\ \/ │ │
│ │ │ │┌───────────────┐ │ │ ┌─────────────┐
│ │ │ ││ЧИСТАЯ КУЛЬТУРА├┐┌─┐┌┼────┼──┘\ │Идентификация│
│ │ │ ││ ├┘└─┘└┼────┼──┐/ │ культур │
│ │ │ │└───────────────┘ │ │ └─────────────┘
\/ \/ \/ │ \/ \/
┌────────────────────────┴─────────────────────────────┐
│ Биопроба │
└──────────────────────────────────────────────────────┘
Рис. 9. Общая схема лабораторного исследования
на сибирскую язву
┌──────────────────────────────────────────────────────────────────────────────────────────────────────┐
│ ИССЛЕДУЕМАЯ КУЛЬТУРА │
└─┬┬───────────┬──────────────────────────────────────────────────────┬───────────────────────────┬────┘
││ │ │ \/
││ │ ┌────┐ │ ┌────┐ ┌───────────────────────────────┐
││ │ │ II │ │ │III ├─┤ Дополнительные методы │
││ \/ └──┬─┘ \/ └────┘ │ изучения культур │
││ ┌────────────────────────────────────┴───────────────────────────────────┐ │ │
││ │ ┌─────────────────────────────────────────────────────────────────┐ │ │1. Определение чувствительности│
││ │ │ Основные методы идентификации │ │ │к антибиотикам. │
││ │ └─────────────────────────────────────────────────────────────────┘ │ │2. Метод определения │
││ │ 1. Тест на капсулообразование in vitro. 7. Морфология клеток в мазках.│ │гемолитической и │
││ │ 2. Тест на патогенность для белых 8. Морфология колоний на │ │протеолитической активностей. │
││ │ мышей и морских свинок (биопроба, плотной питательной среде и │ │3. Тест на лецитиназу. │
││ │ тест на капсулообразование in vivo). характер роста в бульоне. │ │4. Определение способности к │
││ │ 3. Тест с бактериофагом. 9. Спорообразование. │ │росту на минимальной │
││ │ 4. Тесты на чувствительность к 10. Тест на подвижность. │ │питательной среде. │
││ │ пенициллину. │ │5. Дифференциация культур │
││ │ 5. Тест на щелочную фосфатазу. │ │сибиреязвенного микроба по │
││ │ 6. Тест на гемолиз на кровяном агаре. │ │вирулентности in vitro. │
││ └────────────────────────────────────────────────────────────────────────┘ │6. Определение вирулентности │
─┘└─ ┌─────┐ │выделенных культур in vivo. │
\ / │ I │ │7. Идентификация штаммов │
\/ └──┬──┘ │сибиреязвенного микроба с │
┌───────────┴──────────────────────────────────────────────────────────────────┐ │атипичным капсулообразованием. │
│Ускоренная идентификация - ПЦР с праймерами к генам с плазмидной и хромосомной│ │8. Определение MLVA-генотипа. │
│локализацией. │ │ │
└──────────────────────────────────────────────────────────────────────────────┘ └───────────────────────────────┘
Рис. 10. Схема идентификации культур
сибиреязвенного микроба
Приложение N 8
ВРЕМЕННОЙ ГРАФИК
ВЫПОЛНЕНИЯ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ НА СИБИРСКУЮ
ЯЗВУ
1-й день
1. Подготовка материала для исследования.
2. ПЦР.
3. РНГА.
4. МФА.
5. Реакция преципитации по Асколи.
6. Посев материала на питательные среды.
7. Заражение биопробных животных.
2-й день
При наличии роста на питательных средах
1. Отбор колоний на плотных и оценка
характера роста на жидких питательных средах, микроскопия мазков из культур.
2. Рассев отобранных культур с
питательных сред до отдельных колоний на плотных неселективных питательных
средах.
3. ПЦР ┐
} с материалом из колоний.
4. МФА ┘
При наличии чистых культур по результатам
микроскопии и МФА
5. Отсев чистых культур из изолированных
колоний на плотные неселективные питательные среды.
6. Постановка с материалом из чистых
культур опорных идентификационных тестов (капсулообразование, на
чувствительность к пенициллину, с бактериофагом, на щелочную фосфатазу, на
гемолиз).
7. Наблюдение за биопробными животными,
вскрытие павших, высевы на питательные среды и мазки-отпечатки из органов.
8. Микроскопия мазков от биопробных
животных.
При отсутствии роста на питательных
средах
Выполнение только пунктов 7 и 8.
3-й день
При наличии роста на питательных средах
на второй день
1. Окончательный учет результатов опорных
идентификационных тестов с чистой культурой.
2. Постановка остальных основных и
дополнительных идентификационных тестов с чистой культурой.
3. Постановка с материалом из чистых
культур опорных идентификационных тестов (капсулообразование, на
чувствительность к пенициллину, с бактериофагом, на щелочную фосфатазу, на
гемолиз).
4. При наличии чистой культуры и
отсутствии павших животных заражение дополнительных животных материалом из
бульонной или агаровой культуры.
При появлении роста на питательных средах
только на третий день
1. Отбор колоний на плотных и оценка
характера роста на жидких питательных средах, микроскопия мазков из культур.
2. Рассев отобранных культур с
питательных сред до отдельных колоний на плотных неселективных питательных
средах.
3. ПЦР ┐
} с материалом из колоний.
4. МФА ┘
При наличии чистых культур по результатам
микроскопии и МФА
5. Отсев чистых культур из изолированных
колоний на плотные неселективные питательные среды.
6. Постановка с материалом из чистых
культур опорных идентификационных тестов (капсулообразование, на
чувствительность к пенициллину, с бактериофагом, на щелочную фосфатазу, на
гемолиз).
Независимо от роста на питательных средах
7. Наблюдение за биопробными животными,
вскрытие павших, высевы на питательные среды и мазки, отпечатки из органов.
8. Микроскопия мазков от биопробных
животных.
4-10-й день
Проведение исследований по графику 2-3
дней в зависимости от роста на питательных средах и результатов биопроб.