|
Груп- |
Источник |
Эпидемиологические |
Основные
факторы, |
|
1 |
Больные из чи- |
Инфекции,
эндемичные |
Ухудшение
санитарно- |
|
2 |
Больные из чи- |
Инфекции,
неэндемичные |
Миграция
населения в |
|
3 |
Объекты с воз- |
Внезапное и
одновре- |
Нарушение
правил |
|
4 |
Грызуны, насе- |
Наличие природных
оча- |
Контакт населения
с |
5.1.2. Источники первой группы в условиях
ЧС, как правило, не определяются. Заболевания в силу неадекватности
медицинского обеспечения регистрируются уже на пике, когда появилось большое
количество больных и сформировались множественные очаги. Эффективность
противоэпидемических мероприятий в этом случае будет определяться правильным
выбором их направленности (воздействие на пути передачи в случае большой группы
кишечных инфекций или же повышение невосприимчивости населения путем экстренной
или специфической профилактики). Источники второй группы выявляются путем
активного эпиднадзора в местах скученного проживания населения, прибывшего для
восстановления последствий ЧС, а также вернувшихся вынужденных переселенцев.
Источники третьей группы выявляются по следам диверсии, зараженности объектов
окружающей среды, по результатам контроля целостности хранилищ возбудителей
инфекционных болезней в медицинских и ветеринарных учреждениях. Источники
четвертой группы устанавливаются при эпизоотологическом обследовании местности,
где появились первые больные.
5.1.3. На формирование неблагоприятной
эпидемиологической обстановки в условиях различных ЧС оказывает влияние целый
комплекс факторов, основными из которых являются:
- массовость поражений неинфекционной
природы с преобладанием комбинированных поражений;
- дезорганизация социальных структур и
систем, влекущая за собой неадекватные санитарно-гигиенические условия
проживания, ухудшение питания;
- психический стресс, обусловливающий
снижение резистентности людей к инфекционным заболеваниям;
- интенсивная миграция различных
контингентов людей;
- полное или частичное разрушение
материально-технической базы учреждений лечебного и
санитарно-эпидемиологического профиля;
- нарушение экологической системы,
определяющее, в частности, активизацию природно-очаговых и ряда зоонозных
инфекций;
- при некоторых ЧС часто наблюдается
снижение иммунной прослойки населения в связи с непроведением плановой
искусственной иммунизации;
- приобретает особое значение фактор
проникновения инфекционных агентов на ту или иную территорию в результате
возрастающих различного характера миграций, при трудностях соблюдения
национального и международного законодательства по санитарной охране
территории;
- не исключается возможность
использования возбудителей инфекционных заболеваний при террористических и
диверсионных актах.
5.1.4. Эпидемические очаги в условиях ЧС
имеют свои особенности по сравнению со "спокойным" временем. Для них
характерно:
- массовое заражение людей и формирование
множественных очагов за счет активизации механизмов передачи;
- длительность существования за счет
продолжительности заражающего действия невыявленных источников;
- сокращение инкубационного периода в
результате снижения резистентности организма и больших инфицирующих доз;
- отсутствие защиты населения от контакта
с заразными больными в связи с их несвоевременной изоляцией и лечением.
5.1.5. Возбудители инфекционных
заболеваний, представляющие наибольшую опасность распространения в зонах ЧС,
делятся, с учетом контагиозности, на особо опасные и опасные, а по нозоареалам
- на повсеместные и региональные (табл. 2).
Таблица 2
ТИПЫ РАСПРОСТРАНЕНИЯ ОСОБО ОПАСНЫХ И ОПАСНЫХ
ИНФЕКЦИОННЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ ЧЕЛОВЕКА
|
N |
Группы |
Степень |
Тип ареала |
|
|
повсеместный |
региональный |
|||
|
1. |
Антропонозы |
Особо |
|
Холера |
|
2. |
Антропонозы |
Опасные |
Брюшной тиф, |
Амебиаз, малярия |
|
3. |
Зооантропонозы |
Особо |
Сибирская
язва, |
Чума, туляремия, |
|
4. |
Зооантропонозы |
Опасные |
Лептоспирозы, |
Клещевые
борре- |
5.2. Этапы
эпидемиологической работы
Работа по обеспечению эпидемиологического
благополучия в зоне ЧС имеет два этапа. Первый - это
санитарно-эпидемиологическая разведка, второй - активный
санитарно-эпидемиологический надзор.
5.2.1. Санитарно-эпидемиологическая
разведка - это непрерывное и своевременное получение достоверных сведений о
санитарно-эпидемиологическом состоянии территории, входящей в зону ЧС. Целью ее
является оценка санитарно-эпидемиологического состояния зоны ЧС, что
достигается проведением ретроспективного и оперативного анализов
эпидемиологической ситуации. Информационной базой этого служат данные
эпидемиологического обследования и различные источники информации как в зоне
ЧС, так и за ее пределами (рис. 2).
┌──────────────┐ ┌────────────────────┐
│ СПЭБ │ │Данные лечебных и │
┌──────────────────┐ └──────────────┘ │санитарно-эпидемио- │
│Документация ле- │ ┌────────────────────┐ │логических учрежде- │
│чебных и санитар- │ │Данные эпидобследо- │ │ний на территориях │
│но-эпидемиологи- │ │вания СПЭБ в зоне ЧС│ │массового размещения│
│ческих учреждений │ └────────────────────┘ │вынужденных пересе- │
│в зоне ЧС │ ┌────────────────────┐ │ленцев из зоны ЧС │
└──────────────────┘ │Опрос местных медра-│ └────────────────────┘
┌──────────────────┐ │ботников, населения │ ┌────────────────────┐
│Данные администра-│ └────────────────────┘ │Средства массовой │
│тивных органов, │ ┌────────────────────┐ │информации и инфор- │
│формирований, ми- │ │ Результаты текущей │ │мационные сборники │
│нистерств и ве- │ │ эпидработы СПЭБ │ │Минздрава и ВОЗ об │
│домств, задейство-│ └────────────────────┘ │эпидситуации в раз- │
│ванных в ликвида- │ ┌────────────────────┐ │личных регионах │
│ции последствий ЧС│ │Результаты лабора- │ │страны и мира │
└──────────────────┘ │торных исследований │ └────────────────────┘
│последствий ЧС │ ┌────────────────────┐
└────────────────────┘ │ Данные органов │
│миграционной службы │
└────────────────────┘
Рис. 2. Основные источники информации
об эпидемиологической обстановке в зоне ЧС
5.2.1.1. При ретроспективном анализе
определяется структура инфекционной заболеваемости в годы, предшествующие ЧС,
строятся графики динамики сезонной заболеваемости опасными инфекционными
заболеваниями. С учетом статистических показателей устанавливаются "пороговые"
уровни заболеваемости. В отношении особо опасных инфекций уточняются
природно-очаговые территории по чуме, туляремии и т.п., неблагополучные
хозяйства по сибирской язве, бруцеллезу, лептоспирозам. Отмечаются особенности
эпидосложнений по этим инфекциям в период, предшествующий ЧС. Оперативный
анализ строится на основании многочисленных источников информации и результатов
эпидемиологической оценки ситуации в данный отрезок времени.
5.2.1.2. При постоянном пребывании
разведывательных формирований в зонах катастроф санитарно-эпидемиологическая
разведка трансформируется, по сути, в эпидемиологическое наблюдение, задачами
которого являются:
- выявление наличия, характера и
распространенности инфекционных заболеваний среди различных контингентов
населения в зоне ЧС, выявление эпизоотии среди диких и домашних животных;
- определение санитарно-гигиенического
состояния территории, населенных пунктов и водоисточников, отбор проб воды для
лабораторного исследования на патогенную микрофлору и соответствие существующим
ГОСТ;
- учет и обследование местных
санитарно-технических учреждений (санитарные пропускники, бани, прачечные,
водоочистительные сооружения и др.) для решения вопроса об их использовании для
нужд местного и прибывшего в зону ЧС населения;
- оценка сил и средств местных органов
здравоохранения, сохранившихся в зоне ЧС, а также возможности их использования
для проведения противоэпидемических мероприятий. При обследовании медицинских и
санитарно-эпидемиологических учреждений различной ведомственной принадлежности
определяются их силы и средства, готовность к проведению противоэпидемических
мероприятий, потребность в материальных ресурсах.
5.2.1.3. От администрации территорий,
формирований министерств и ведомств, участвующих в ликвидации последствий ЧС,
необходимо получить информацию о наличии потенциально опасных объектов в плане
развития эпидосложнений. Такими объектами могут быть:
- разрушенные коммунальные объекты
(системы водоснабжения, канализация и др.);
- действующие предприятия общественного
питания;
- учреждения медицинского и ветеринарного
профилей, где имеются объекты с посевами возбудителей инфекционных заболеваний;
- места компактного проживания населения,
утратившего кров в результате ЧС;
- места проживания бригад строителей и
т.п., прибывших для ликвидации последствий ЧС;
- объекты пищевой промышленности и
хранения сельхозпродукции и т.п., где возможно массовое размножение грызунов;
- места захоронения скота, павшего от
сибирской язвы.
5.2.1.4. От органов миграционной службы
следует получить информацию о потоках вынужденных переселенцев из зоны ЧС. Она
используется при запросах санэпидучреждений соседних административных
территорий об эпидемиологической обстановке в местах компактного проживания
вынужденных переселенцев. Необходимость учета таких данных определяется
возможностью заноса с "обратной волной" беженцев опасных инфекционных
заболеваний.
5.2.1.5. Результаты
санитарно-эпидемиологической разведки во многом определяют оперативность и
действенность профилактических и противоэпидемических мероприятий. В первую
очередь разведка проводится в тех населенных пунктах, где имеется или имелась
до ЧС развитая инфраструктура: города, поселки городского типа. Во вторую
очередь обследуются поселки сельского типа, где расселилось значительное количество
вынужденных переселенцев. В последнюю очередь обследуются населенные пункты
сельского типа, которых не коснулись миграционные процессы.
5.2.1.6. К участию в
санитарно-эпидемиологической разведке необходимо привлекать специалистов
местных учреждений санитарно-эпидемиологического профиля.
5.2.1.7. Для проведения эпидразведки из
специалистов эпидотделения СПЭБ с привлеченными медицинскими работниками
формируются подвижные эпидемиологические группы. Количество их определяется
начальником СПЭБ с учетом имеющегося и приданного автотранспорта, количества
привлеченных к работе местных специалистов, а также объемом поставленных задач.
За каждой группой закрепляется часть территории, обслуживаемой СПЭБ. Задачи
перед эпидгруппами ставятся, по существу, однотипные, но с конкретизацией ряда
моментов соответственно особенностям обслуживаемой территории.
5.2.1.8. Задачей зоопаразитологической
группы при проведении эпидразведки является обследование в населенных пунктах
жилищ и других объектов на заселенность мышевидными грызунами и эктопаразитами,
а также отлов носителей и переносчиков особо опасных инфекций на участках
природно-очаговых территорий, входящих в зону ЧС.
5.2.1.9. В начале
санитарно-эпидемиологической разведки посещаются администрации города, района,
поселка и т.п. В администрациях берутся необходимые сведения, а также они
ставятся в известность о проведении на той или иной территории
санитарно-противоэпидемических мероприятий, обговаривается порядок
взаимодействия.
5.2.1.10. Посещаются медицинские
учреждения, где проводится анализ инфекционной заболеваемости и берутся
сведения о характере оказываемой населению медицинской помощи, о выполнении
плана профилактических прививок в течение 1-3 предшествующих годов;
определяется готовность лечебных учреждений к перепрофилированию под
инфекционные госпитали, изоляторы.
5.2.1.11. Следующий этап - посещение
коммунальных объектов: очистных сооружений, водопроводов, систем канализования.
При этом определяется количество воды, подаваемой населению, степень ее очистки
и обеззараживания; берутся пробы воды на разных отрезках водоразводящей сети и
из поверхностных водоемов. При оценке системы канализования определяются
наиболее неблагополучные объекты: залитые нечистотами подвалы домов, очистные
сооружения, места сброса сточных вод в поверхностные водоемы и т.п.
5.2.1.12. На объектах общественного
питания определяются контингенты населения, подлежащие обследованию на
носительство патогенной микрофлоры. Определяется порядок взятия проб у разных
рабочих смен предприятий пищевой промышленности.
5.2.1.13. Ознакомление с работой
коммунальных объектов, предприятий пищевой промышленности и т.п. необходимо
проводить с участием прикрепленных к СПЭБ санитарных врачей.
5.2.1.14. В случае выхода из строя
значительной части лечебно-профилактических учреждений следует дополнительно к
разведке организовать подворные обходы. Для этого целесообразно использовать
работников названных учреждений. Составляются списки опроса населения. При этом
опрос ведется в плане выявления наиболее характерных симптомов инфекционных
заболеваний: желтизна кожных покровов и склер, диареи, лимфадениты, карбункулы,
отеки, пневмонии, повышенная температура.
5.2.1.15. Все данные, полученные в
результате санэпидразведки, передаются в аналитическую группу СПЭБ, задачей
которой является проведение ретроспективного и оперативного анализа с целью
прогнозирования обстановки, подготовки ежедневных, еженедельных, месячных и
заключительного отчетов СПЭБ. При необходимости руководитель аналитической
группы выезжает, особенно на первых этапах работы, в медицинские учреждения для
работы с имеющейся там документацией.
5.2.1.16. Итогом санэпидразведки является
оценка санитарно-эпидемиологического состояния зоны ЧС (табл. 3). При
благополучном состоянии отпадает необходимость в привлечении дополнительных сил
и средств в зону ЧС. Неустойчивое состояние определяет необходимость
организации активного санитарно-эпидемиологического надзора с привлечением
дополнительных сил и средств. Неблагополучное и, тем более, чрезвычайное
состояние требуют проведения активных и адекватных противоэпидемических
мероприятий с привлечением других специализированных противоэпидемических
формирований.
Таблица 3
ОЦЕНКА САНИТАРНО-ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКОГО СОСТОЯНИЯ
ЗОНЫ ЧС
|
Состо- |
Инфекционная |
Наличие |
Санитарно- |
Возможность |
Адекватность |
|
Благо- |
Нозологическая |
Эпизоотическая |
Удовлетворитель- |
На соседних
с |
Качественное |
|
Неус- |
Спорадические |
Эпизоотии чу- |
Неудовлетвори- |
В районах, отку- |
Отдельные
виды |
|
Небла- |
Групповые слу- |
Эпизоотии чу- |
Неудовлетвори- |
В районах, отку- |
Силы и средства |
|
Чрез- |
Быстрое нара- |
Эпизоотии чу- |
Неудовлетвори- |
В районах, отку- |
Силы и средства |
5.2.2. Активный
санитарно-эпидемиологический надзор представляет собой комплекс мероприятий,
направленных, в конечном итоге, на выявление инфекционных болезней,
представляющих особую опасность для населения зоны ЧС, для сопредельных, а
также удаленных территорий.
5.2.2.1. Активный эпидемиологический
надзор отличается от эпидемиологического надзора в "спокойное" время
повышенной частотой обследования определенных контингентов населения и объектов
окружающей человека среды с применением экспресс-методов индикации и
диагностики возбудителей инфекционных заболеваний. Изменяется также и способ
оповещения о болезнях.
5.2.2.2. Отчетность о результатах надзора
в координирующий центр представляется ежедневно. Еженедельно представляются
аналитические материалы о тенденциях в изменении эпидемиологической обстановки
в зоне ЧС, об объеме и эффективности проводимых профилактических и
противоэпидемических мероприятий с предложениями об оптимизации. Информация об
ухудшении обстановки в зависимости от критериев, представленных в табл. 3,
может быть экстренной, передаваемой немедленно, и срочной, передаваемой не
позднее 4 часов после установления обстоятельств ее ухудшения.
5.2.2.3. Важное значение приобретает
санитарно-просветительная работа среди населения. Необходимо проводить эту
работу постоянно и регулярно, используя все доступные средства массовой
информации. Основными задачами при этом являются: успокоение общественного
мнения путем постоянного информирования о складывающейся эпидемиологической
обстановке и о проводимых мероприятиях со стороны медицинских учреждений и
формирований, доведение до сведения населения сигнальных признаков опасных
инфекционных заболеваний, за которыми ведется надзор, рекомендации о порядке
обращения в медицинские учреждения в случаях обнаружения больных,
подозрительных на опасные инфекционные заболевания.
5.2.2.4. Организация работы эпидотделения
СПЭБ при проведении активного эпиднадзора имеет определенные отличия от
санитарно-эпидемиологической разведки, которые выражаются, прежде всего, в
заблаговременном планировании работы на конкретных объектах, а также
специализацией подвижных противоэпидемических групп.
5.2.2.5. Специализация заключается в
разграничении функций подвижных противоэпидемических групп. При этом зачастую
может возникнуть необходимость дополнительного формирования таких групп из
числа местных медицинских работников. На одну из групп, в зависимости от
складывающейся обстановки, может быть возложена работа в медицинских
учреждениях; на другую - работа среди различных контингентов населения,
подверженных высокому риску заражения в силу неадекватных санитарных условий
проживания или представляющих значимую эпидемиологическую опасность при
появлении среди них инфицированных лиц и попадании инфекционных агентов на
интенсивно действующие факторы передачи (вода, пищевые продукты); на третью -
усиление контроля объектов окружающей человека среды на зараженность
возбудителями инфекционных заболеваний; на четвертую - продолжение
санэпидразведки в населенных пунктах, не охваченных активным эпидемиологическим
надзором.
5.2.2.6. Направления работы в отношении
лечебно-профилактических учреждений:
- анализ инфекционной заболеваемости;
- контроль своевременности подачи
экстренных извещений;
- полнота и своевременность лабораторных
обследований больных;
- своевременность госпитализации больных,
изоляции и госпитализации контактных;
- своевременность и правильность
назначения этиотропного лечения;
- контроль излеченности инфекционных
больных;
- своевременность и эффективность
противоэпидемических мероприятий в очагах инфекции и оказание практической
помощи при их проведении;
- контроль выполнения требований
санитарно-противоэпидемического режима работы в лечебных учреждениях;
- контроль и организация проведения
плановых прививок различным возрастным группам населения, а также экстренной и
специфической профилактики и т.п.
5.2.2.7. Направления работы в отношении
населения, вошедшего в группы риска или представляющего значимую
эпидемиологическую опасность для окружающих:
- полный учет групп лиц (строительные
бригады и т.п.), прибывших для ликвидации последствий ЧС, ознакомление с
условиями их размещения;
- определение мест компактного размещения
беженцев, вынужденных переселенцев, ознакомление с условиями их проживания;
- контроль санитарного состояния
работающих предприятий общественного питания, пищевой промышленности, детских
школьных и дошкольных учреждений, коммунальных предприятий;
- организация регулярного
бактериологического обследования компактно проживающих групп населения и
декретированных контингентов с периодичностью в зависимости от обстановки, но
не реже 1 раза в месяц;
- выдача рекомендаций по улучшению
санитарного состояния мест компактного проживания населения и санитарного
состояния предприятий и учреждений с декретированными контингентами работающих
и контроль выполнения сделанных предписаний;
- важное значение при определенных
условиях приобретает комплекс мероприятий, проводимых совместно с
ветеринарно-санитарной службой, по предупреждению широкого распространения
некоторых опасных заболеваний (бруцеллез, сибирская язва, туберкулез и др.).
5.2.2.8. Мероприятия по контролю
зараженности объектов внешней среды:
- выявление всех источников питьевого и
хозяйственного водоснабжения, используемых населением в зоне ЧС;
- регулярное исследование проб питьевой
воды на патогенную микрофлору и на соответствие санитарным нормам по уровню
бактериальной загрязненности;
- выдача рекомендаций в отношении
централизованного водоснабжения населения в зоне ЧС и по оборудованию местных
источников водоснабжения;
- оценка состояния канализования
населенных пунктов в зоне ЧС, исследование сточных вод в местах их сброса в
открытые водоемы на патогенную микрофлору с использованием современных
технических приспособлений;
- отлов грызунов и эктопаразитов в
населенных пунктах и в поле для исследования на зараженность особо опасными
природно-очаговыми инфекциями.
5.2.2.9. Мероприятия при продолжении
санэпидразведки в населенных пунктах, не охваченных активным
санитарно-эпидемиологическим надзором, не отличаются от изложенных ранее.
6.
Бактериологическая работа СПЭБ
6.1. Особенности
бактериологической работы при различных
санитарно-эпидемиологических состояниях в зоне ЧС
6.1.1. При неустойчивом состоянии, когда
имеются неадекватные санитарно-гигиенические условия проживания населения,
исследования желательно вести в широком диапазоне инфекций, которые отнесены к
опасным в условиях ЧС, в плане возможных эпидемиологических осложнений на
данной территории и в конкретный отрезок времени. При этом значительного
внимания требует исследование питьевой воды, продуктов питания на предмет
соответствия их санитарным нормам и на патогенную микрофлору. Представляется
необходимым также исследование полевого материала на чуму и туляремию в
природных очагах и, при наличии эпизоотии этих инфекций, проб из различных
хозяйств, неблагополучных по бруцеллезу, сибирской язве, лептоспирозу.
6.1.2. При неблагополучном
санитарно-эпидемиологическом состоянии, характеризующемся групповыми случаями
опасных инфекционных заболеваний или угрозой появления особо опасных
инфекционных заболеваний вследствие массового вовлечения в эпизоотии
синантропных грызунов, основное внимание необходимо уделить целенаправленным
исследованиям на инфекции, обстановка по которым обострилась, а также
бактериологическому контролю качества питьевой воды и продуктов питания или же
полевого материала на угрожающие природно-очаговые заболевания.
6.1.3. При чрезвычайном состоянии, когда
тенденции эпидпроцесса реализовались в виде вспышек особо опасных инфекций или
интенсивного распространения опасных инфекционных заболеваний, направленность
бактериологических исследований практически не отличается от таковой при
неблагополучном санитарно-эпидемиологическом состоянии.
6.1.4. Исследования по
санитарно-гигиенической экспертизе питьевой воды, продуктов питания, а также
бактериологическая диагностика инфекций при благополучном санитарно-эпидемиологическом
состоянии проводятся местными лабораториями. В возникшей необходимости
расширения круга и объема исследований может быть использована лабораторная
база привлекаемых для работы в зоне ЧС оперативных противоэпидемических
формирований.
6.2. Организация
работы бактериологического отделения
6.2.1. Примерная схема размещения
функциональных групп СПЭБ приведена на рис. 3. В соответствии с требованиями СП
1.2.011-94 помещения, где ведутся работы с материалом, подозрительным на
зараженность возбудителями инфекционных заболеваний I-IV групп патогенности,
считаются заразной зоной. Пути движения заразного материала считаются
условно-заразной зоной и доступ в нее посторонним лицам должен быть запрещен.
│
\/
┌────────────────────┐ ┌────────────────────────┐
┌─ ─┤ Группа приема и ├───┬─────>│Группа сан-бак. анализов├─ ─┐
│регистрации анализов│ │ │ │
│ └─────────┬──────────┘ │ └────────────────────────┘ │
│ │
│ ┌─────────┴──────────┐ │ ┌────────────────────────┐ │
- ─┤ Группа посевов ├───┼──────┤ Группа биопроб ├─ -
│ └────┬───────────────┘ │ └────────────────────────┘ │
│ /\ │
│ \/ │ │ │
┌─────────────┴──────┐ │ ┌────────────────────────┐
├─ ─┤Группа идентификации├───┼──────┤ Группа специальных ├─ ─┤
│ │ │ │ методов исследования │
└────────────────────┘ │ └────────────────────────┘ │
└─ - - - - - - - - - - - - - ┼─┬─ - - - - - - - - - - - - - - - ─┘
┌────────────────────┐ │ ┌────────────────────────┐
│Группа обеззаражива-│<──┘ │ │ Группа стерилизации и │
│ния и мойки │ │разлива питательных сред│
└───────┬────────────┘ │ └─────────────┬──────────┘
└ - - - - - - - - ─┴─ - - - - - - - - ┘
Рис. 3. Примерная схема размещения функциональных
групп
бактериологического отделения
Примечания: сплошные линии - пути
движения заразного и подозрительного на зараженность материала; пунктирные
линии - пути движения чистого материала.
6.2.2. Функциональное деление
бактериологического отделения может трансформироваться в зависимости от местных
условий, от санитарно-эпидемиологического состояния зоны ЧС и т.п. При
благополучии пораженной территории по особо опасным природно-очаговым инфекциям
и сельскохозяйственным зооантропонозам отпадает необходимость в группе биопроб
и специалисты ее могут быть переведены в группы посевов, идентификации или
санитарно-бактериологических анализов. Возможны и другие вариации.
6.2.3. Работа бакотделения проводится в
соответствии с действующими инструктивно-методическими документами. В
дополнение к ним прилагаются: схема комплексного исследования материала на
кишечную группу инфекций, а также ряд новых методических приемов (Приложения
7.2-7.5).
Приложение N 7.1
(Справочное)
КЛАССИФИКАЦИЯ ЧРЕЗВЫЧАЙНЫХ СИТУАЦИЙ
С ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКИМИ ПОСЛЕДСТВИЯМИ
|
Группа |
Тип |
Вид |
|
При- |
Геофизические
опасные |
Землетрясения |
|
Геологические
опасные |
Оползни, просадки
земной |
|
|
Гидрологические
опасные |
Наводнения,
половодья, сильные |
|
|
Метеорологические
и |
Ураганы,
засухи |
|
|
Инфекционные |
Единичные случаи
экзотических и |
|
|
Техно- |
Аварии с выбросом
или |
На транспорте, в
научно-исследо- |
|
Аварии на
системах |
На коммунальных
системах жизнео- |
|
|
Гидродинамические |
Прорывы плотин
(дамб, шлюзов и |
|
|
Эколо- |
Связанные с
изменением |
Деградация почвы
(опустынивание, |
|
Связанные с
изменением |
Истощение водных
ресурсов, необ- |
|
|
Конф- |
|
Военные
столкновения, межнацио- |
Приложение N 7.2
(Справочное)
СХЕМА КОМПЛЕКСНОГО ИССЛЕДОВАНИЯ МАТЕРИАЛА
НА КИШЕЧНЫЕ ИНФЕКЦИИ
1 день исследования ┌──┐ Испражнения
│ │ (доставка в течение 2-3 ч)
Высев при доставке материала ─────────│ ├────────────┐ 4-5 мл 1% ПВ, pH 7,8-8,0
на кишечно-тифозную группу ├──┤ │ Высев через 5-6 ч на холерный
инфекций и стафилококк и др. │xx│ │ и др. вибрионы
условно-патогенные микробы └──┘ │ │
│ ┌────┐ \/
┌───────┬────────┬───────┬───────┐ ┌──┐ └>│ ЩА │ ┌──┐
\/ \/ \/ \/ \/ │ │ └─┬──┘ │ │
┌────┐ ┌───┐ ┌────┐ ┌───┐ ┌───┐ │ │- селенитовая │ │ │
│Плос│ │ВСА│ │Эндо│ │МСА│ │КА │ ├──┤ среда 3-5 │ ├──┤
└─┬──┘ └─┬─┘ └─┬──┘ └─┬─┘ └─┬─┘ │xx│ мл │ │xx│
\/ \/ \/ \/ \/ └┬─┘ │ └──┘ ┌────┐
┌───────────────────┐ ┌────────────────┐ │ │ II ПВ, pH 7,8-8,0 - - - >│ ЩА │
2 день│ Отбор колоний на │ │Мазки по Граму, │ │ │ Высев через 5-16 - └┬──┬┘
│среды Олькеницкого,│ │отбор колоний на│ │ │ 18 ч в зависимости ┌───────┘ │
│ Клиглера │ │ косой агар │ │ │ от эпидобстановки │ через │
└─────────┬─────────┘ └───────┬────────┘ │ │ │ 18-24 ч │
\/ \/ │ ┌───┐ ├─────────────────────────┼───────┐ │
┌────────────────────┐┌────────────────┐ └─────>│ВСА│ │ ┌────────────────────┘ \/ \/
3 день│Слайд-агглютинация с││Определение тес-│ └───┘ \/ \/ ┌────┐
│кишечно-тифозными ││тов патогенности│ ┌───────────────────────┐ │ПЦР │
│групповыми и моноре-││и чувствитель- │ │Слайд-агглютинация, оп-│ └────┘
│цепторными сыворот- ││ности к антибио-│ │ределение чувствитель- │
│ками, минимальный ││тикам │ │ности к антибиотикам, │
│пестрый ряд, опреде-│└────────────────┘ │отбор колоний и на ман-│
│ление чувствитель- │ │нозосахарозную среду │
│ности к антибиотикам│ └───────────────────────┘
└────────────────────┘
4 день Учет результатов, выдача
окончательного ответа
Схема исследования на кишечные инфекции
включает в себя бактериологическую диагностику дизентерии, сальмонеллезов,
эшерихиозов, холеры, а также заболеваний, вызываемых условно-патогенными
микроорганизмами.
Данная схема апробирована при работе СПЭБ
в условиях ЧС. Помимо традиционных бактериологических приемов с использованием
молочно-солевого агара (МСА), кровяного агара (КА), щелочного агара (ЩА), сред
Плоскирева (Плос), Эндо, висмут-сульфитного агара (ВСА) и др., здесь
используется полимеразная цепная реакция (ПЦР). При применении ускоренных
методов ответ выдается через каждые 6 ч исследования.
Приложение N 7.3
(Справочное)
ИСПОЛЬЗОВАНИЕ МАГНОИММУНОСОРБЕНТОВ ДЛЯ
ИССЛЕДОВАНИЯ
НА ОСОБО ОПАСНЫЕ И ДРУГИЕ ИНФЕКЦИИ
Для выделения и концентрирования антигенного материала
различной природы находят широкое применение в практике
иммуносорбционные методы. Усовершенствование сорбентов связано с
включением в них магнитного материала, что позволяет значительно
расширить возможности применения сорбента и ускорить манипуляции
на всех этапах его использования. Магноиммуносорбенты (МИС) могут
быть применены при поиске антигенов различной природы
(микроорганизмов, вирусов, биологически активных веществ белковой
природы животного и растительного происхождения) в объектах
внешней среды (суспензия почвы, пищевые продукты, вода открытых
водоемов, воздух и т.д.), в патологическом материале от больных
или умерших людей, в органах и тканях животных. Особое значение
имеют МИС при исследовании сильно загрязненных объектов, например,
канализационных стоков. Объем исследуемых проб практически
неограничен. МИС могут быть использованы в бактериологическом и
иммунобиологических методах исследования (иммуноферментном,
иммунофлуоресцентном и др.). Чувствительность этих методов с
применением магноиммуносорбентов повышается на несколько порядков
2 3
и достигает 5 x 10 - 5 x 10 микробных клеток. Работу с
магноиммуносорбентами осуществляют с помощью созданных технических
устройств, размещенных в компактной укладке, легко
транспортируемой ручным способом. Укладка позволяет производить
исследования как в лабораторных, так и в полевых условиях.
В состав укладки входят:
1) пульт "ЭЛЕКТРОНИКА" с
гребенкой для проведения иммуноферментного анализа;
2) дозатор;
3) пенал держателя цангового и стержней,
который представляет собой стерилизатор с 15-ю стержнями для сбора
магносорбента и одного цангового держателя для крепления стержня;
4) пенал магнитной палочки, который
состоит из трубчатого пенала с 10-ю стеклянными чехлами и двумя магнитными
палочками;
5) пенал контейнеров, который
представляет собой стерилизатор с 15-ю контейнерами для транспортировки проб;
6) пенал ловушек с магнитными пробками,
состоящий из стерилизатора с 10-ю ловушками "конус" и 5-ю ловушками
"проточная";
7) леска рыболовная длиной 100 м,
предназначенная для крепления ловушек "конус" при взятии проб;
8) постоянный магнит.
В контейнер для магнитной ловушки
наливают 5-10 мл физиологического раствора. На магнитную пробку наносят с
помощью дозатора 0,2 мл 10% суспензии диагностикума магноиммуносорбентного.
Далее:
- включают пульт "ЭЛЕКТРОНИКА"
в сеть, подключают разъемный штекер дозатора к гнезду пульта
"ДОЗАТОР";
- погружают рабочую поверхность дозатора
в суспензию магноиммуносорбентов, нажимают на кнопку дозатора и переносят
диагностикум на магнитную пробку ловушки, отпуская кнопку дозатора.
Магнитную пробку с магноиммуносорбентами
помещают в контейнер с физиологическим раствором и транспортируют до места
забора проб.
На месте постановки ловушки магнитную
пробку достают из контейнера и помещают в ловушку. Заряженную
магноиммуносорбентом магнитную ловушку "конус" с помощью
прикрепленной к ней лески нужной длины опускают в исследуемый объект внешней
среды (водоем, канализационный сток и др.) и фиксируют ее.
"Проточную" ловушку подсоединяют с помощью шлангов к водопроводному
крану, цистерне и т.п. Контакт МИС с исследуемым объектом - до 24 часов. По
окончании этого срока магнитную пробку вынимают из ловушки и переносят ее в
контейнер с физиологическим раствором для доставки проб в лабораторию. Ловушки
помещают в герметичный пенал для последующего обеззараживания (3-5% раствор
хлорамина, 6% раствор перекиси водорода, 3% раствор лизола).
В лаборатории все работы с исследуемыми
пробами проводят как с материалом, подозрительным на зараженность возбудителями
инфекционных заболеваний.
Подготовку проб к проведению
бактериологического анализа осуществляют следующим образом:
- готовят ряд пробирок (5-7 шт.) с
физиологическим раствором по 5-7 мл в каждой и мерную пробирку объемом 10 мл с
0,8-1,0 мл физиологического раствора;
- устанавливают стержень из
мягкомагнитного материала в цанговый держатель;
- открывают контейнер;
- с помощью стержня в цанговом держателе
переносят исследуемую пробу с магнитной пробки в первую пробирку с
физиологическим раствором (для каждой пробы используют новый стержень);
- устанавливают магнитную палочку в
стеклянный чехол;
- помещают магнитную палочку с чехлом в
первую пробирку с пробой;
- опускают магнитную палочку в чехол до
упора, при этом гранулы магноиммуносорбента фиксируются на чехле;
- в этом положении вынимают магнитную
палочку с чехлом из первой пробирки и переносят во вторую;
- выдвигают магнитную палочку из чехла,
при этом гранулы магноиммуносорбента отпадают на дно пробирки;
- отмывание гранул магноиммуносорбента
осуществляют путем последовательного переноса пробы из первой до последней
пробирки (5-7 шт.);
- после внесения пробы в мерную пробирку
доводят объем физиологического раствора в ней до 2 мл, получая 10% суспензию
магноиммуносорбента;
- обеззараживают все предметы,
контактировавшие с пробой.
Исследуемую пробу высевают на
соответствующие питательные среды согласно схеме проведения бактериологического
анализа на ту или иную инфекцию следующим образом:
- магноиммуносорбент переносят с помощью
магнитной палочки на плотную селективную питательную среду и рассевают этой же
палочкой; в жидкие питательные среды магносорбент вносят так же, как при
отмывании в физиологическом растворе;
- пробу с МИС вносят в 0,75-1,5 М раствор
роданида натрия, pH 5,0-5,5, экспозиция 1-5 минут (в этом растворе происходит
диссоциация комплекса "антиген-антитело" и живые клетки отделяются от
МИС); надосадочную жидкость с десорбированными микробными клетками высевают на
селективные среды.
Проведение иммуноферментного анализа
Иммуноферментный анализ проводят с
использованием полистироловых микропланшет (предварительной сенсибилизации не
требуется) и пульта "ЭЛЕКТРОНИКА", входящего в укладку, по следующей
схеме:
- пробу (почву, фекалии и т.п.
суспендируют в 3-30 мл физиологического раствора), обеззараживают прогреванием,
добавлением формалина, мертиолата и пр.;
- в пробу вносят 0,5 мл 10% взвеси
диагностикума магноиммуносорбентного, экспозиция 1-2 часа при температуре 22
+/- 4 град. C при перемешивании;
- по истечении времени контакта гранулы
магноиммуносорбента собирают на стеклянном чехле магнитной палочки и переносят
в пробирки с физиологическим раствором для последовательного отмывания (5-7
раз);
- в лунки первого ряда микропланшета
вносят 100 мкл рабочего разведения иммунопероксидазного конъюгата и 100 мкл
магноиммуносорбента с пробой; две последние лунки ряда - контрольные, в них
вносят магноиммуносорбент, не контактировавший с пробой;
- в лунки 2-го, 3-го, 4-го рядов вносят
по 200 мкл фосфатно-солевого буфера для отмывания от несвязавшегося конъюгата.
Подготовленный планшет устанавливают на
проволочную рамку пульта и помещают в рабочую ячейку на верхней панели прибора.
Операции проводят в следующей последовательности:
- включают прибор в сеть, нажимают
клавишу "СЕТЬ", загорается красная индикаторная лампочка
"СЕТЬ"; дважды нажимают на кнопку "ТАЙМЕР", на цифровом
табло появляются показания "55-55" (ВНИМАНИЕ! При нажатии на любую
кнопку прибора удерживать ее не менее 2 сек.).
- выставляют время инкубации 20 мин.
нажатием кнопки "МИН";
- нажимают кнопку "АВТ", при
этом запускается счетчик времени и происходит автоматическое перемешивание в
первом ряду планшета;
- нажимают кнопку "РУЧНОЙ" и
переносят гребенкой магноиммуносорбенты в лунки второго ряда;
- нажимают на кнопку "СБРОС",
удаляют гребенку, выставляют время отмывания кнопкой "МИН" (2-3
мин.), нажимают кнопку "АВТ", при появлении звукового сигнала
нажимают кнопку "ТАЙМЕР"; отмывание в третьем и четвертом ряду
проводят аналогично;
- для реагирования с
субстрат-индикаторным раствором, который готовят ex tempore,
магноиммуносорбенты из четвертого ряда переносят в лунки пятого ряда
микропланшета, как описано выше (инкубация 1-2 мин.).
После развития цветной реакции
магноиммуносорбент с фиксированным на нем ферментом удаляют гребенкой из лунок
5-го ряда. Учет результатов проводят визуально относительно контроля.
Положительными считаются пробы, цвет которых достоверно отличается от цвета
контроля. Учет результатов лучше проводить с помощью прибора-анализатора
колориметрического иммуноферментного типа АКИ-Ц-01.
Примечание: пробу, доставленную на
магнитной ловушке, снимают стержнем в цанговом держателе, отмывают 5-7 раз в
физиологическом растворе, обеззараживают и проводят исследование по описанной
выше схеме.
Приложение N 7.4
(Справочное)
РАННЕЕ ОБНАРУЖЕНИЕ И ИДЕНТИФИКАЦИЯ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ
НЕКОТОРЫХ ОСОБО ОПАСНЫХ ИНФЕКЦИЙ В ОБЪЕКТАХ,
СОДЕРЖАЩИХ ЕДИНИЧНЫЕ КЛЕТКИ
Нахождение возбудителей чумы, сибирской
язвы, бруцеллеза, туляремии в малых количествах в объектах, подлежащих
исследованию, представляет достаточно распространенное явление. Малое
количество микробных клеток может содержаться в материале от людей, в отношении
которых начата антибиотикотерапия, в материале от трупов людей и животных,
пролежавших в теплый период года более 6 часов, в пробах из различных объектов
внешней среды. Зачастую количество микробных клеток в исследуемых объектах
оказывается ниже порога чувствительности известных методов.
Излагаемый ниже методический прием
позволяет в кратчайшие сроки обнаружить и идентифицировать указанные
возбудители при их минимальном содержании в исследуемом материале.
Накопление микробов проводят в организме
белых мышей, которым исследуемый материал в жидкой фазе вводят подкожно в
область спины в смеси с гепаринизированной кровью морской свинки, желтком
куриного яйца и кортизоном или гидрокортизоном.
Общеизвестным способом из сердца морской
свинки берут кровь, стерильно переливают ее в пробирку, в которую
предварительно добавляют антикоагулянт гепарин из расчета 0,2 мл на 5 мл крови.
Такую гепаринизированную кровь можно использовать в течение суток.
Для получения желтка свежие куриные яйца
моют щеткой с мылом в теплой воде, обтирают спиртом, быстро обжигают на пламени
горелки, разбивают, сливают желтки, тщательно отделяя их от белков, в
стерильный сосуд и перемешивают стерильной стеклянной палочкой или пипеткой.
Такие желтки можно использовать в течение недели.
Приготавливают смесь гепаринизированной
крови морской свинки с желтком куриного яйца в соотношении 1:1. К исследуемому
материалу в жидкой фазе добавляют равное количество указанной смеси и кортизон
или гидрокортизон из расчета 5-7 мг на одно животное. Полученную суспензию
набирают в шприц и вводят белым мышам подкожно в область спины. При этом
помощник фиксирует животное, а экспериментатор пинцетом захватывает кожу в
складку в области крестца и вводит иглу под контролем глаза так, чтобы срез
иглы был на уровне лопаток. После этого плавным движением, надавливая на
поршень, вводят нужное количество материала.
Животных, зараженных исследуемым
материалом, вскрывают через 24 и 48 часов после заражения. Грызунов умерщвляют
хлороформированием и прикрепляют приколышами спиной кверху. Кожу над крестцом
животного захватывают хирургическим пинцетом, приподнимают вверх, делают
маленький поперечный разрез ножницами, в образовавшееся "окошечко"
вводят закругленную браншу ножниц и делают дугообразные разрезы кожи, обходя по
бокам место введения. Образовавшийся лоскут кожи (в виде фартука) откидывают на
голову грызуна. При этом легко обнаруживают место введения за счет пропитывания
мягких тканей кровью. Место введения подвергают иммунофлуоресцентному,
серологическому и бактериологическому исследованию. Для этого, в соответствии с
общепринятой схемой, проводят посев петлей на пластины элективной среды, затем
изготавливают мазки-отпечатки для окраски по Граму и исследования методом
флуоресцирующих антител. Затем ножницами тщательно срезают ткани места
введения, пропитанные кровью, переносят их в стерильные фарфоровые ступки, в
которые предварительно наливают 1,0 мл стерильного физиологического раствора, и
тщательно растирают пестиком. По 0,2 мл полученной эмульсии вносят в чашки Петри
с элективными средами и равномерно распределяют по поверхности агаровых
пластин. После впитывания эмульсии в агар одну из чашек используют для
постановки пробы с фагами, другую - для определения антибиотикочувствительности
с помощью бумажных дисков. Оставшиеся грубые частицы тканей места введения в
фарфоровых ступках вновь тщательно растирают в 1 мл стерильного
физиологического раствора, полученный гомогенизат переносят в пробирки,
обеззараживают по общепринятой методике и используют для постановки серологических
реакций.
Приложение N 7.5
(Справочное)
ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ПОЛИМЕРАЗНОЙ ЦЕПНОЙ РЕАКЦИИ
Полимеразная цепная реакция (ПЦР) в
условиях работы СПЭБ используется для:
- идентификации выделенных культур чумы,
холеры, сибирской язвы и других возбудителей опасных инфекционных заболеваний;
- оценки эпидемиологической значимости
возбудителей чумы, холеры и сибирской язвы.
Идентификация культур осуществляется по
наличию специфичных для определенных видов микроорганизмов нуклеотидных
последовательностей. Эпидемиологическая значимость определяется по наличию
нуклеотидных последовательностей, детерминирующих признаки патогенности
бактерий. В организационном и методическом плане следует руководствоваться в
целом "Методическими указаниями по детекции патогенной микрофлоры в
клиническом материале, пищевых продуктах, объектах внешней среды и выполнению
идентификации клеток с помощью полимеразной цепной реакции" (М., 1996).
Учитывая полевые условия работы, под данные исследования следует выделить два
помещения: в первом приготавливаются реакционные смеси и ставится ПЦР, а во
втором осуществляется детекция продуктов амплификации.
Подготовка проб
При исследовании чистой культуры
используется метод кипячения в дистиллированной воде.
С этой целью делают суспензию исследуемого штамма в
9 8
дистиллированной воде в концентрации 10 - 10 мк кл/мл. Суспензию
прогревают на водяной бане при 100 град. C в течение 10-15 мин.
Смесь объемом 0,5 мл переносят в микроцентрифужные пробирки и
центрифугируют при 12000 об./мин. в течение 5 минут. Супернатант
используют для постановки ПЦР. Ткани биопробных животных с места
введения растирают в фарфоровой ступке с дистиллированной водой.
Отбирают 200-300 мкл надосадочной жидкости. Выделение плазмидной
ДНК осуществляют методом щелочного лизиса взвеси с последующей
депротеинизацией фенолхлороформной смесью и переосаждением ДНК в
этаноле.
Проведение ПЦР осуществляют в
соответствии с инструкцией фирмы - изготовителя диагностического набора для
выявления ДНК возбудителя чумы, холеры и т.п. методом ПЦР. Для подготовки проб
сибиреязвенного микроба также может быть использован метод кипящей взвеси
штаммов после подращивания в питательном бульоне. С этой целью исследуемая
колония засевается в среду BHI и инкубируется в течение 2,5 час при 37 град. C
с аэрацией, затем добавляется пенициллин из расчета 1000 ед./мл, посев
инкубируется еще 20 минут, после чего пробу кипятят 20 минут в водяной бане и
5-7 мкл используют для постановки реакции.
Учет результатов методом гель-электрофореза
Продукты ПЦР анализируют с помощью
электрофореза в 2% агаровом геле в ТАЕ буфере, содержащем бромистый этидий (0,5
мкг/мл). Смесь 10 мкл ПЦР-продукта и 1 мкл буфера для нанесения образца вносят
в лунки агарозного геля. Электрофорез ДНК проводят при напряжении
электрического тока 5-10 в/см. Фрагменты анализируемой ДНК выявляют под
ультрафиолетом на трансиллюминаторе.
Результаты учитывают по наличию полос
ДНК, расположенных на том же уровне, что и в положительном контроле.
Оборудование, реактивы и материалы
Программируемый термоциклер
(амплификатор), аппарат для ДНК электрофореза, источник постоянного тока,
ультрафиолетовый трансиллюминатор, холодильник - морозильная камера (до -20
град. C).
Микродозаторы (1-20, 20-200, 200-1000
мкл), микроцентрифужные пробирки - виалы (0,5-1,5 мл), наконечники для
варипипеток, центрифуга настольная на 12000 об./мин., фотоаппарат
"Зенит", фотопленка "Микрат-300" или "Тасма" (132
ед.), оранжевый светофильтр на объектив, фотобачок, водяная баня, иономер
(pH-метр).
Реактивы: наборы диагностические для
выявления ДНК возбудителя (холеры, чумы, сибирской язвы и т.д.) методом
амплификации ("Ниармедик" Москва, "Микроб" Саратов,
"Литех" Москва), электрофорезный буфер ТАЕ (0,05 М трис-ацетат, pH
8,0 и 0,002 М ЭДТА), этидий бромистый, 10-кратный буфер для нанесения образца
(0,25% бромфенолового синего, 25% (объем/вес) фикол в H2O), агароза для ДНК
электрофореза (Sigma, Chomapol), фотореактивы.
Приложение N 7.6
(Справочное)
РЕКОМЕНДУЕМАЯ БИБЛИОГРАФИЯ
1. Временные методические указания по
организации и проведению эпидемиологического надзора в природных очагах чумы
России в условиях ограниченных финансовых и материально-технических ресурсов.
М., 1998.
2. Безопасность работы с микроорганизмами
I-II группы патогенности. Санитарные правила. СП 1.2.011-94. М., 1994. 152 с.
3. ГОСТ 2761-84. Источники
централизованного хозяйственно-питьевого водоснабжения.
4. ГОСТ 26669-85. Продукты пищевые и
вкусовые. Методы отбора проб для микробиологических анализов.
5. ГОСТ 26670-91. Продукты пищевые и вкусовые.
Методы культивирования микроорганизмов.
6. ГОСТ 21237-75. Мясо. Методы
бактериологического анализа.
7. ГОСТ 9958-81. Изделия колбасные и
продукты из мяса. Методы бактериологического анализа.
8. ГОСТ 2874-82. Вода централизованного
водоснабжения. Вода питьевая. Гигиенические требования и контроль за качеством.
9. ГОСТ 9225-84. Молоко и молочные
продукты. Методы микробиологического анализа.
10. Инструкция по борьбе с мышевидными
грызунами. Саратов, 1971.
11. Инструктивно-методические указания по
диагностике, лечению и профилактике чумы. Саратов, 1977.
12. Инструкция по организации и
проведению противохолерных мероприятий. М., 1995.
13. Инструкция по применению
серологических методов диагностики при эпизоотологическом обследовании
природных очагов чумы. Саратов, 1974.
14. Концепция Государственной
санитарно-эпидемиологической службы по предупреждению и действиям в
чрезвычайных ситуациях. Утверждена Госкомсанэпиднадзором России 07.10.93.
15. Лабораторная диагностика, лечение и
профилактика мелиоидоза. Методические рекомендации. Волгоград, 1994.
16. Лабораторная диагностика сибирской
язвы у животных и людей, обнаружение возбудителя в сырье животного
происхождения и объектах внешней среды. Методические указания. Утверждены 1
сентября 1986 г. ГУВ Госагропрома СССР и ГУКИ МЗ СССР.
17. Методические рекомендации по
лабораторной диагностике кишечного иерсиниоза. Иркутск, 1979.
18. Методические рекомендации по
определению чувствительности микроорганизмов к антибиотикам методом диффузии в
агаре с использованием дисков. МЗ СССР N 2675-83 от 10.03.83. М., 1983.
19. Методические указания по поселковой
дератизации в природных очагах чумы. Алма-Ата, 1975.
20. Методические рекомендации по
санитарно-бактериологическому контролю на предприятиях общественного питания и
торговли пищевыми продуктами. МЗ СССР 2657-82 от 31.12.82.
21. Методические рекомендации по
эпидемиологическому надзору за внутрибольничными инфекциями. М., 1988.
22. Методические рекомендации по
лабораторным методам диагностики при эпизоотологическом обследовании природных
очагов туляремии. М., 1983.
23. Методические рекомендации по
составлению комплексного плана противохолерных мероприятий. М., 1991.
24. Методические указания по детекции
патогенной микрофлоры в клиническом материале, пищевых продуктах, объектах
внешней среды и выполнению генетической идентификации клеток с помощью
полимеразной цепной реакции. М., 1996.
25. Онищенко Г.Г., Ефременко В.И.,
Грижебовский Г.М. Противоэпидемическое обеспечение населения в условиях
вооруженного конфликта в Чеченской Республике. Ставрополь, 1996.
26. Положение о функциональной подсистеме
РСЧС надзора за санитарно-эпидемиологической обстановкой, согласованное с МЧС
России и утвержденное Госкомсанэпиднадзором России 29.03.96, N 01-19/50-11.
27. Приказ МЗ СССР N 535 от 22.04.85
"Об унификации микробиологических методов исследования, применяемых в
клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений"
(приложение 1).
28. Приказ Министерства Российской Федерации
по делам гражданской обороны, чрезвычайным ситуациям и ликвидации последствий
стихийных бедствий и Министерства здравоохранения Российской Федерации "О
взаимодействии МЧС России и Минздрава России по предупреждению и ликвидации
чрезвычайных ситуаций" от 02.04.97 N 185/94.
29. Приказ Министерства здравоохранения
Российской Федерации "О силах и средствах РСЧС" от 21.06.96 N 162-10.
30. Приказ Госкомсанэпиднадзора России
"Об организации специализированных противоэпидемических бригад" от
29.03.96 N 44.
31. Профилактика и борьба с заразными
болезнями, общими для человека и животных. Сборник санитарных и ветеринарных
правил. Госкомсанэпиднадзор России, Минсельхозпрод России, М., 1996.
32. Санитарные правила и нормы. СанПиН
2.1.4.559-96 "Гигиенические требования к качеству воды центральных систем
питьевого водоснабжения. Контроль качества."
33. Тихонов Н.Г., Онищенко Г.Г., Яковлев
А.Т. Руководство по организации и проведению санитарно-эпидемиологических
мероприятий оперативными службами санэпиднадзора в чрезвычайных ситуациях.
Волгоград, 1995.
34. Шапошников А.А., Карниз А.Ф.
Организация санитарно-гигиенических и противоэпидемических мероприятий в
чрезвычайных ситуациях на современном этапе. М., 1999.