|
Результаты
выделения колифагов |
НВЧ |
95%-е
доверительные |
|||||
|
500 |
200 |
100 |
50 |
20 |
нижний |
верхний |
|
|
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
8 |
|
+ |
- |
- |
- |
- |
2 |
0,5 |
6 |
|
- |
+ |
- |
- |
- |
1 |
0,5 |
4 |
|
- |
- |
+ |
- |
- |
1 |
0,5 |
4 |
|
- |
- |
- |
+ |
- |
1 |
0,5 |
4 |
|
- |
- |
- |
- |
+ |
1 |
0,5 |
4 |
|
+ |
+ |
- |
- |
- |
4 |
0,5 |
11 |
|
+ |
- |
+ |
- |
- |
4 |
0,5 |
11 |
|
+ |
- |
- |
+ |
- |
3 |
0,5 |
8 |
|
+ |
- |
- |
- |
+ |
3 |
0,5 |
8 |
|
- |
+ |
+ |
- |
- |
4 |
0,5 |
11 |
|
- |
+ |
- |
+ |
- |
3 |
0,5 |
8 |
|
- |
+ |
- |
- |
+ |
3 |
0,5 |
8 |
|
- |
- |
+ |
+ |
- |
2 |
0,5 |
6 |
|
- |
- |
+ |
- |
+ |
2 |
0,5 |
6 |
|
- |
- |
- |
+ |
+ |
2 |
0,5 |
6 |
|
+ |
+ |
+ |
- |
- |
10 |
3 |
23 |
|
+ |
+ |
- |
+ |
- |
9 |
2 |
21 |
|
+ |
+ |
- |
- |
+ |
9 |
2 |
21 |
|
+ |
- |
+ |
+ |
- |
8 |
2 |
19 |
|
+ |
- |
+ |
- |
+ |
7 |
1 |
17 |
|
+ |
- |
- |
+ |
+ |
6 |
0,5 |
16 |
|
- |
+ |
+ |
+ |
- |
9 |
2 |
21 |
|
- |
+ |
+ |
- |
+ |
7 |
1 |
17 |
|
- |
+ |
- |
+ |
+ |
6 |
0,5 |
16 |
|
- |
- |
+ |
+ |
+ |
4 |
0,5 |
11 |
|
+ |
+ |
+ |
+ |
- |
20 |
6 |
61 |
|
+ |
+ |
+ |
- |
+ |
19 |
5 |
56 |
|
+ |
+ |
- |
+ |
+ |
17 |
5 |
47 |
|
+ |
- |
+ |
+ |
+ |
15 |
4 |
37 |
|
- |
+ |
+ |
+ |
+ |
11 |
3 |
26 |
Приложение N 2
МЕТОД КОНЦЕНТРИРОВАНИЯ ЭНТЕРОВИРУСОВ ИЗ ВОДОПРОВОДНОЙ
И РЕЧНОЙ ВОДЫ С ПОМОЩЬЮ ИОНООБМЕННЫХ СМОЛ
Для концентрирования из водопроводной и
речной воды энтеровирусов методом сорбции на искусственных сорбентах
применяются ионообменные смолы (производство г. Кемерово) АВ-17, АВ-17-8, АВ-17
2П, ИК или их зарубежные аналоги.
а) Подготовка ионообменных смол для
проведения санитарно-вирусологического анализа осуществляется следующим
образом: сухую ионообменную смолу замачивают в течение 2-3 сут. в
дистиллированной воде. Затем воду сливают и смолу обрабатывают смесью равных
объемов свежеприготовленных растворов 2%-ной соляной кислоты и 10%-ного хлорида
натрия из расчета 1 л смеси на 100 г смолы. Продолжительность контакта 24 часа.
После этого смолу отмывают дистиллированной водой до
нейтрального pH 7,0.
б) Перед концентрированием pH исследуемой
пробы воды доводят до значений 5,5-6,0.
Для осуществления концентрирования
стеклянную бюретку (колонку) диаметром 1,2-1,5 см, к нижнему концу которой
присоединен резиновый шланг с завинчивающимся зажимом, устанавливают в штативе
строго вертикально. На дно бюретки помещают небольшой слой стекловаты для
удержания анионактивной смолы. В колонку вносят суспензию смолы в
дистиллированной воде, удаляя через резиновый шланг снизу избыток воды. Заполнение
колонки следует проводить тщательно, избегая образования пузырьков воздуха в
столбике смолы. Высота столбика смолы 10-12 см.
в) Пробу воды с pH, доведенным
до 5,5-6,0, располагают выше колонки. Через резиновый шланг с винтовым зажимом
на конце воду подают в колонку. Винтовыми зажимами регулируют подачу воды со
скоростью 10-12 мл/мин. Зажимом нижнего шланга уравнивают скорость выходящей
воды со скоростью подаваемой воды.
г) После окончания концентрирования
осуществляют десорбцию вирусов 0,5 М фосфатным буфером с pH 8,2. Для этого в
колонку вносят 10 мл фосфатного буфера, интенсивно встряхивают и оставляют в
горизонтальном положении в течение 1 час. при комнатной температуре или в течение 12-16 час. при +4
град. C.
Далее элюат переносят в стерильный флакон,
доводят pH до 7,0 раствором 1 М соляной кислоты и обрабатывают фреоном, эфиром
или хлороформом, затем антибиотиками и микостатином для удаления сопутствующей
микрофлоры.
После этого 1-5 мл элюата исследуют на
наличие энтеровирусов в тканевых культурах, а оставшуюся часть подвергают
ультрацентрифугированию в режиме 40000 об./мин. в течение 4 часов для последующего исследования в
реакциях пассивной гемагглютинации (РПГА), радиоиммунного анализа (РИА) в
твердой фазе или иммуноферментного анализа (ИФА) на наличие антигена вируса ГА.
Приготовление 0,5 М
фосфатного буфера с pH 8,2
Готовят навески:
Na2HPO4
- 89,0 г (для раствора A),
KH2PO4 - 68,06 г (для раствора B).
Каждую навеску вносят в отдельную мерную
колбу, добавляют дистиллированную воду до объема 1,0 л, растворяют соли.
Смешивают 96,9 мл раствора A и 3,1 мл раствора B и одним из этих растворов
адъюстируют pH буфера до 8,2.
Приложение N 3
ДВУХЭТАПНЫЙ МЕТОД КОНЦЕНТРИРОВАНИЯ АНТИГЕНА
ВИРУСА
ГЕПАТИТА A И
ЭНТЕРОВИРУСОВ В ПРОБАХ ПИТЬЕВОЙ ВОДЫ
И ВОДЫ ВОДОИСТОЧНИКОВ
Процесс концентрирования включает в себя
два этапа: сорбция-десорбция и осаждение с помощью сульфата аммония.
I этап. В качестве сорбента используют
смесь, состоящую из ионообменной смолы АВ-17 (см. Приложение 2) и гидроксида
алюминия (ГОСТ 11841-26), которой заполняют специальную колонку (можно
использовать бюретку со стекловатой для удержания сорбента). Колонка
представляет собой стеклянную трубку с размерами: диаметр 36-38 мм, длина
250-300 мм. В нижней части колонки впаивают перегородку из пористого стекла
(стеклянный фильтр Шотта N 2). На резиновую трубку, надетую на нижний конец
колонки, устанавливают винтовый зажим. Затем в колонку вносят предварительно
подготовленную (см. Приложение 2) ионообменную смолу (высота столбика смолы должна
составлять не менее 30-40 мм) и навеску гидроксида алюминия (8-10 г).
Исследуемую воду в объеме 30 и более
литров подкисляют с помощью соляной кислоты до pH 3,0-4,5 и в соответствующей
емкости (лучше стеклянная бутыль на 10 л) располагают выше колонки и подают в
нее через резиновую трубку, соединенную со стеклянным дротом, пропущенным через
резиновую пробку (N 36-38). Этой пробкой герметично закрывают верхнее отверстие
колонки. Скорость пропускания воды через колонку регулируют с помощью винтового
зажима. Она должна составлять 10-15 мл/мин. (по числу капель, исходя из
расчета, что 20 капель составляют 1 мл).
Вирус (антиген) элюируют 0,05 М
глициновым буфером с pH 11,5, который добавляют в объеме 100 мл в колонку после
завершения этапа фильтрования и перекрытия винтового зажима. Содержимое
тщательно перемешивают и выдерживают в течение 10-15 мин. Затем элюат удаляют
из системы, открыв винтовой зажим. С помощью глицинового буфера (pH 1,5)
устанавливают pH на уровне 7,0-8,0.
Антимикробную обработку проводят с
помощью фреона, эфира или хлороформа, добавляя последний
к элюату в соотношении 1:10. Смесь перемешивают в течение 30 мин. и
центрифугируют при 5000-6000 об./мин.
в течение 1 час. Супернатант используют для заражения тканевых культур или
вторичного концентрирования сульфатом алюминия.
II этап. Вторичное концентрирование
(осаждение) вирусов проводят на холоду. К супернатанту
дробно (в течение 20-30 мин.) добавляют 1/2 объема насыщенного раствора
сульфата аммония ((NH4)2SO4), тщательно перемешивают и оставляют на ночь. Утром
смесь центрифугируют в течение 1 час. при 5000-6000 об./мин. Супернатант сливают, а осадок
растворяют в 1-2 мл физиологического раствора с pH 7,2-7,4.
При необходимости концентрат делят на две
части, одну из которых исследуют на наличие антигена ВГА с помощью
серологических методов. Другую часть обрабатывают соответствующим образом и
используют для заражения тканевых культур по общепринятой методике. При этом
необходимо проводить не менее трех пассажей, так как на 1-2 пассажах возможно
ЦПД за счет токсичности концентрата.
Настоящая методика обеспечивает
концентрирование вирусов в 10-30 тыс. раз и выше, в зависимости от объема
исследуемой воды (от 10 до 30 л и более), и позволяет обойтись без сложного
дорогостоящего оборудования.
Приготовление
глицинового буфера
Навеску 0,385 г аминоуксусной кислоты
растворяют в 100 мл воды и получают глицин. К 50 мл глицина добавляют 50 мл 0,1
н раствора гидроксида натрия, получают глициновый буфер с pH 11,5.
Для приготовления глицинового буфера с pH
1,5-1,6 к 38 мл глицина добавляют 62 мл 0,1 н раствора соляной кислоты.
Приготовление
насыщенного раствора сульфата аммония
В 1,0 л теплой воды (30-35 град. C)
растворяют 800 г сульфата аммония ((NH4)2SO4). Полученный раствор фильтруют,
доводят до pH 7,2 и охлаждают в рефрижераторе.
Приложение N 4
ОПРЕДЕЛЕНИЕ АНТИГЕНА ВИРУСА ГЕПАТИТА A МЕТОДОМ
РАДИОИММУННОГО АНАЛИЗА
Антиген вируса гепатита A (ВГА-АГ) в
концентрированных пробах воды выявляли методом радиоиммунологического анализа
(РИА) в его твердофазном варианте.
Принцип метода заключается в следующем.
I этап - сенсибилизация "твердой
фазы".
К "твердой фазе" добавляют
раствор специфического гамма-глобулина, содержащего
анти-ВГА. После контакта избыток антител удаляют, "твердую фазу"
отмывают. Антитела в виде слоя молекул остаются прикрепленными к поверхности
"твердой фазы".
II этап - взаимодействие со специфическими ВГА-АГ.
К "твердой фазе" с
иммобилизованными анти-ВГА добавляют раствор ВГА-АГ (в нашем исследовании -
концентрат - элюат воды), который во время инкубации соединяется с антителами,
прикрепленными к стенке "твердой фазы", и формируют
таким образом иммунный комплекс "антиген - антитело". Избыток
непрореагировавшего антигена удаляют, "фазу" отмывают.
III этап - индикация прошедшей реакции.
К "твердой фазе", обработанной,
как описано выше, добавляют индикаторные антитела (анти-ВГА), меченные
радиоактивным йодом (йод-125). Меченые анти-ВГА
прикрепляются к активным центрам ВГА-АГ, входящего в иммунокомплекс,
сформированный на предыдущем этапе. Увеличение в исследованной пробе
радиоактивности в 2,1 раза, по сравнению с отрицательным контролем, оценивается
как положительный результат.
В качестве "твердой фазы"
использовали пластмассовые пробирки для микропроб емкостью 1,5 мл
отечественного производства (ПО "Медполимер", ТУ 64-2-300-80).
Источником специфического гамма-глобулина, необходимого для приготовления иммунодиагностикума,
служил пул сывороток реконвалесцентов ГА, собранных через 6-12 месяцев после
выписки из стационара и имевших в остром периоде анти-ВГА 1 М в диагностическом
титре. Маркеры гепатита B не определялись ни в остром,
ни в реконвалесцентном периодах. Специфическая активность сывороток
реконвалесцентов, определяемая в реакции конкурентной нейтрализации в
разведении 1:1000, должна обеспечивать ингибирование тестового ВГА не менее, чем на 80%.
Очищенный препарат гамма-глобулина
получают путем высаливания сульфатом аммония с последующей доочисткой
колоночной хроматографией на ДЕАЕ-сефадексе А-50. Для сорбции на поверхности
"твердой фазы" используют фракции, соответствующие верхней трети пика
хроматограммы, для йодирования - фракцию, содержащую наибольшую концентрацию
белка.
Приготовление индикаторной системы - меченных радиоактивным йодом анти-ВГА - осуществляют по
методу <...> (1962) с использованием хлорамина T.
Иммобилизацию анти-ВГА на поверхности
"твердой фазы" осуществляют в объеме 10 мкл путем обработки пробирок
рабочим разведением гамма-глобулина при температуре 42-45 град. C в течение 2
час. в водяной бане. После
двукратного отмывания и дополнительной обработки 1% раствором бычьего
сывороточного альбумина в течение 20 минут при том же температурном режиме
"твердую фазу" отмывают дважды, просушивают при комнатной температуре
и хранят при температуре +4, +10 град. C до использования.
Определение ВГА-АГ
в воде
Пробы концентрат-элюат размораживают,
перемешивают, при наличии хлопьевидного осадка центрифугируют при 3000 об./мин. в течение 15 мин. или
фильтруют через бумажный фильтр. Мелкозернистый осадок на результаты реакции не
влияет и удаления не требует. По 10 мкл каждой пробы вносят в
сенсибилизированную "твердую фазу" и инкубируют в водяной бане в
течение 2 час. После двукратного отмывания в пробирки вносят по 10 мкл меченых
анти-ВГА из расчета 10000 имп./мин. в 10 мкл метки. Время экспозиции 1 час в
тех же условиях. После 6-кратного отмывания остаточную радиоактивность проб
просчитывают в гамма-счетчике (Ультрагамма - 1280,
ЛКБ, Швеция). Пробы, радиоактивность которых в 2,1 раза превышает показатели
радиоактивности отрицательного контроля, считают положительными и исследуют
повторно в реакции нейтрализации.
Реакцию нейтрализации выполняют в двух
параллельных пробах. Пробы воды в объеме 10 мкл вносят в две пробирки с
иммобилизованными анти-ВГА, инкубируют 2 час. в вышеописанных условиях. Затем в одну пробирку добавляют
меченый препарат анти-ВГА, смешанный в равных количествах с гамма-глобулином
из сыворотки, не содержащей анти-ВГА (контроль), а в другую пробирку - меченый
препарат анти-ВГА, смешанный в равных количествах с гамма-глобулином из
сыворотки, не содержащей анти-ВГА (опыт). Конечное разведение
меченого анти-ВГА составляет 10000 имп./мин. в 10 мкл, оба вида гамма-глобулина
(содержащий и не содержащий анти-ВГА) имеют одинаковую концентрацию по белку.
После 1-часовой инкубации в тех же условиях, 6-кратного отмывания и подсчета
радиоактивности проводят сравнение результатов двух параллельных проб. Если в
опытной пробе уровень радиоактивности на 40% и более ниже,
чем в контрольной пробе, результат считают положительным, т.е. в пробе воды
содержится ВГА-АГ.
Приложение N 5
ОПРЕДЕЛЕНИЕ АНТИГЕНА ВИРУСА ГЕПАТИТА A В ПРОБАХ ВОДЫ
МЕТОДОМ ИММУНОФЕРМЕНТНОГО АНАЛИЗА
Антиген вируса гепатита A определяют в
предварительно обработанных пробах воды с применением "Тест-системы
иммуноферментной для выявления антигена вируса гепатита A", разработанной
и выпускаемой Нижегородским НИИЭМ.
"Тест-система иммуноферментная для
выявления антигена вируса гепатита A" представляет собой комплект,
состоящий из следующих компонентов:
1. Иммуносорбент - 96-луночные
полистироловые планшеты с плоским дном с сорбированными антителами к вирусу
гепатита A (анти-ВГА), относящимися к иммуноглобулинам класса <...>.
2. Конъюгат,
представляющий собой анти-ВГА, меченные пероксидазой, выделенные колоночной
гель-хроматографией на сефадексе G-200 из сыворотки реконвалесцента ГА и
конъюгированные с пероксидазой (<...>-3,о фирмы "Олайне", Рига)
периодатным методом по NaKa<...>.
3. Сыворотка крови человека, не
содержащая анти-ВГА.
4. Положительный контрольный образец -
антиген ВГА, полученный методом роллерного культивирования на клетках почек
эмбриона макаки резус (FRhk-4).
5. Отрицательный контрольный образец ОК-1
- суспензия клеток <...>- 4, не зараженных ВГА и отрицательный
контрольный образец ОК-2, - 10%-ная водная суспензия фекалий, не содержащий ВГА.
6. Твин-80 - детергент.
7. Орто-фенилендиамин - субстрат
пероксидазы.
8. Гидроперит.
9. Цитратный буферный раствор.
Набор рассчитан на исследование 96 проб,
включая контрольные. Желательно каждую пробу
исследовать в трех повторностях.
Определение
антигена ВГА в воде (схема анализа)
1. В лунки иммуносорбента А-1, А-2, А-3
внести по 0,05 мл положительного контрольного образца (ПК), в лунки А-4, А-5,
А-6 по 0,05 мл отрицательного контрольного образца I, в лунки А-7, А-8, А-9 по
0,05 мл отрицательного контрольного образца II. В остальные лунки внести по
0,05 мл пробы воды после ультрацентрифугирования. Лунки Н-1, Н-2, Н-3 оставить
незаполненными. Закрыть планшет крышкой и выдерживать его при температуре 22-26
град. C от 16 до 20 час.
2. Приготовить 1 л фосфатно-солевого
буферного раствора 0,01М с pH 7,2-7,4, содержащего 0,05% твина-80 (ФСБ-Т). Для
этого: 2,9 г двузамещенного фосфата натрия (Na2HPO4 x 12H2O), 0,265 г
однозамещенного фосфата натрия (NaH2PO4 x 12H2O) и 9,0 г хлорида натрия (NaCl)
растворить в 1,0 л дистиллированной воды, при перемешивании добавить 0,5 мл
твина-80, все перемешать. Раствор ФСБ-Т хранить при температуре 6 +/- 2 град. C
в течение 7 суток.
3. Отсосать содержимое лунок в сосуд с
5%-ным раствором монохлорамина с помощью перистальтического или водоструйного
насоса и промыть лунки 4 раза ФСБ-Т, заполняя их до краев.
4. Растворить содержимое ампулы с
конъюгатом в ФСБ в соответствии с указаниями на этикетке, затем 5 мл
разведенного конъюгата внести в ампулу с отрицательной сывороткой ОС,
перемешать и полученное содержимое внести по 0,05 мл во все лунки, кроме Н-1,
Н-2, Н-3.
5. Закрыть планшет крышкой и выдерживать
его при комнатной температуре 37 +/- 1 град. C в течение 2 часов. Затем
отсосать содержимое лунок и промыть 6 раз, как изложено выше в п. 3.
6. Приготовить субстратный раствор. Для
этого содержимое ампулы с ФЦБ растворить в 10,0 мл дистиллированной воды.
Таблетку гидроперита растворить в 100 мл дистиллированной воды. 0,2 мл раствора
гидроперита и содержимое ампулы (4,000 мл) с ОФД растворить в 10,0 мл ФЦБ.
Раствор должен быть прозрачным и бесцветным. Смесь не хранят.
7. Во все лунки планшета вносят по 0,1 мл
свежеприготовленного субстратного раствора. Планшет выдерживают в темном месте
при температуре 22-26 град. C в течение 30 минут.
8. Готовят раствор серной кислоты 0,2
моль/куб. дм. Для этого к 80,0 мл дистиллированной воды добавляют 20,0 мл
концентрированной серной кислоты, охлаждают.
9. В лунки планшета добавляют по 0,05 мл
раствора серной кислоты, 0,2 моль/куб. дм, для остановки реакции, и немедленно
производят учет результатов.
Учет результатов
Учет результатов производят в
соответствии с рекомендациями, изложенными в наборе "Тест-системы".